Результат интеллектуальной деятельности: Способ изготовления биомеханического сенсора для измерения сил адгезии в системе "клетка-клетка"

Способ изготовления биомеханического сенсора для измерения сил адгезии в системе «клетка-клетка» относится к области молекулярно-клеточной физиологии и может быть использован в клинической диагностике для изучения адгезивных свойств поверхности нативных клеток.

В области молекулярно-клеточной физиологии известны различные экспериментальные подходы в исследовании адгезионных свойств клеток. Особое внимание среди них уделено исследованию механических свойств клеток адгезиометрическими методами (Маленков А.Г., Чуич Г.А. Межклеточные контакты и реакции клеток. – М.: Медицина, 1976. – 136 с.). В частности, распространенным является метод жидкостной дезинтеграции, включающий взятие материала (клеток крови), приготовление препаратов, инкубацию клеток в микрокамере и определение процента проадгезировавших клеток после их смыва буферным раствором, подсчет проадгезировавших клеток. Существенным недостатком такого подхода является приблизительное определение числа проадгезировавших клеток и невозможность измерить силу сцепления клетки со стеклянной подложкой, более того, полученная информация не дает объективной картины, присутствующей в системе «клетка-клетка», т.к. силы сцепления в биологических системах в значительной степени определяются экспрессией молекул клеточной адгезии между двумя контактирующими клетками, в то время как прилипание клетки к стеклу зависит не только от ее рецепторного аппарата, но и от инкубационной среды, содержащей белковые комплексы.

В области сканирующей зондовой микроскопии известны способы измерения адгезии биологических объектов к острию нанозонда методом силовой спектроскопии. В основе этого метода лежит измерение межмолекулярных сил, возникающих между модифицированным металлическим зондом и клеткой (Sagvolden G., Glaever I., Pettersen E.O., Feder J., Cell adhesion force microscopy //Proc. Natl. acad. Sci. USA. – 1999. – V. 96. – P. 471-476). Однако данный способ имеет ряд ограничений. Одной из непреодолимых характеристик является сила взаимодействия между клеткой и зондом, которая увеличивается при удлинении времени сканирования из-за возникновения связей. Причем консоли, используемые для измерения адгезии клеток очень жесткие по сравнению с клетками и тканями. Кроме того, для «мягких образцов» (образцов с пониженной механической жесткостью) трудно разделить относительный вклад поверхностных сил в адгезию и деформацию образца.

Наиболее близким по своей сущности к заявляемому является способ изучения адгезивных сил на молекулярном уровне методом атомно-силовой микроскопии с использованием сенсоров, в качестве которых выступают одиночные клетки, клеточные монослои и полимерные микросферы, иммобилизованные на tipless кантилеверaх (Benoit M., Gaub H.E. Measuring cell adhesion force with the atomic force microscope at the molecular level //Cell tissues organs. – 2002. – V. 172. – P. 174-189), включающий измерение сил адгезии в системе «эритроцит-эритроцит». Для осуществления способа изготавливают сенсор адгезии следующим образом:

1) эритроциты группы А или О, полученные от соответствующих пациентов, разбавляют фосфатно-солевым буфером (PBS; pH=7,4) и подвергают центрифугированию на микроцентрифуге при 10 000 об/мин в течение 2 мин;

2) отделяют эритроциты от плазмы и наносят их в виде монослоя на аминосиликонизированные стекла, которые готовят путем обработки Si-O слоя поверхности стекла N1-[3-(триметоксисимил)пропил] диэтиленамином (Aldrich, USA) при 80°С в течение 10 мин, затем промывают в этаноле и воде при 80°С в течение 80 мин;

3) для приготовления силового сенсора стандартный tipless кантилевер Si₃N₄ обрабатывают N1-[3-(триметоксисимил)пропил] диэтиленамином (Aldrich, USA) при 80°С в течение 10 мин, затем промывают в этаноле и воде при 80°С в течение 80 мин с целью получения аминофункционализированной поверхности, которую обрабатывают лектином WGA (Sigma, USA) в концентрации 100 мг/мл;

4) одиночные эритроциты прикрепляют к функционализированному tipless кантилеверу в режиме силовой спектроскопии;

5) измеряют силы адгезии между эритроцитами на атомно-силовом микроскопе в режиме силовой спектроскопии.

- выделение эритроцитов группы А или О путем центрифугирования;

- нанесение эритроцитов в виде монослоя на аминсиликонизированные стекла;

- приготовление силового сенсора из стандартного tipless кантилевера путем его аминосиликонизирования и последующей обработки лектином WGA (Sigma, USA);

- прикрепление одиночного эритроцита к функционализированному tipless кантилеверу в режиме силовой спектроскопии;

- измерение силы адгезии между эритроцитами на атомно-силовом микроскопе в режиме силовой спектроскопии;

предлагается внести следующие изменения:

- использовать для приготовления биосенсора стандартный tipless кантилевер серии CSG 11/tipless, который обрабатывают 2% раствором желатина, приготовленным на дистиллированной воде, и суспензию лимфоцитов, причем приготовление сенсора проводят в режиме силовой спектроскопии в процессе однократного сканирования;

- готовить суспензию лейкоцитов путем центрифугирования цельной гепаринизированной крови при 1500 об/мин в течение 5 мин без отмывки в фосфатном буфере;

- проверять жизнеспособность лейкоцитов в тестах in vitro путем окраски клеточной суспензии 0,4% раствором трипанового синего в фосфатно-солевом буфере (рН 7,2-7,3) и последующего подсчета погибших форм на световом микроскопе (мертвые клетки окрашиваются в синий цвет, живые клетки не окрашиваются), в эксперимент отбирать лейкосуспензии с жизнеспособностью клеток не менее 95%;

- наносить в центр стеклянной поверхности каплю 2% раствора желатина, на противоположные края стеклянной поверхности помещать каплю лейкосуспензии и каплю эритроцитарной суспензии;

- помещать образец во влажную камеру, насыщенную парами воды и закрытую мембраной;

- проводить процедуру силовой спектроскопии участка размером 50x50 мкм, погружая tipless кантилевер в каплю желатина, затем переводить область сканирования на край стеклянной поверхности, где находится капля лейкосуспензии, под контролем оптической системы микроскопа, выбрать участок с расположенными на нем отдельно лежащими лимфоцитами, осуществить подвод tipless кантилевера к отдельному лимфоциту. После прилипания лимфоцита к tipless кантилеверу проводить сканирование суспензии зернистых форм лейкоцитов;

- регистрировать с помощью приготовленного биосенсора силовые кривые 30 зернистых форм лейкоцитарных клеток в режиме силовой спектроскопии. Затем перевести область сканирования образца на край, где располагается капля суспензии эритроцитов. Регистрировать снятие силовых кривых 30 эритроцитов;

- по полученным кривым вести расчет сил адгезии с помощью программного обеспечения Nova.

Предлагаемый способ позволит получить объективные данные о силах адгезии между клетками крови за счет использования биомеханического сенсора, который состоит из tipless кантилевера и живой клетки – лимфоцита. Модификация tipless кантилевера с использованием лимфоцита позволит смоделировать условия, максимально приближенные к условиям ex vivo, и получить объективные данные о силах адгезии в биологических системах, поскольку эти клетки несут на своей поверхности различные семейства рецепторов адгезии, вступающих во взаимодействие с биологическими молекулами в организме. Кроме того, применение 2% раствора желатина, в качестве модифицирующего агента, к которому прикрепляется клетка, позволит сохранить ее жизнеспособность, использование влажной камеры, создающей оптимальные условия для сохранения нативной формы клеток. Совмещение способа приготовления биосенсора и процедуры измерения сил адгезии за одну процедуру сканирования позволяет сократить время исследования и увеличивает скорость манипулирования объектами за счет быстрой смены областей сканирования.

Техническим результатом заявленного способа является получение объективных данных о силах адгезии между клетками крови в норме и при развитии лейкоза, которые позволяют осуществлять диагностику раннего обнаружения остаточной популяции лейкозных клеток после лечения и решить важную научно-практическую задачу, связанную с подбором адекватной программы лечения заболевания, а также прогнозировать и выявлять ранние цитологические признаки начинающейся декомпенсации ремиссионного состояния.

Отличительными признаками заявленного способа являются:

- использование нативных лимфоцитов для приготовления биосенсорных АСМ-зондов, которые являются живыми модельными системами, несущими на своей поверхности рецепторы адгезии, что позволяет получить объективные данные о силах взаимодействия в системе «клетка-клетка»;

- проведение тестов по определению жизнеспособности клеток крови in vitro позволяет отбирать нативные жизнеспособные лимфоциты крови для изготовления биосенсора, который позволяет моделировать силы адгезии в живых системах;

- использование 2% раствора желатина для обработки tipless кантилевера позволяет сохранить жизнеспособность лимфоцита, прикрепленного к нему, и поддерживает оптимальный баланс сил при выдвижении пьезосканера и надавливании на клетку с определенной силой, что позволяет избежать воздействия на поверхность чрезмерных нагрузок при силовом надавливании;

- изготовление биосенсоров в процессе проведения одной процедуры сканирования позволяет экономить время исследования и увеличивает скорость манипулирования объектами за счет быстрой смены областей сканирования на одном стекле;

- использование в процессе сканирования влажной камеры для создания условий, обеспечивающих сохранение нативного функционально активного и морфологически неизменного состояния клеток в течение времени, достаточного для сканирования образцов.

Предлагаемый способ осуществляют следующим образом.

Готовят 2% раствор желатина на дистиллированной воде. Проводят разделение цельной крови путем центрифугирования (при 1500 об/мин в течение 5 мин, без отмывки в фосфатном буфере) на суспензии лейкоцитов и эритроцитов. Проверяют жизнеспособность лейкоцитов в тестах in vitro путем окраски клеточной суспензии 0,4% раствором трипанового синего в фосфатно-солевом буфере (рН 7,2-7,3) и последующего подсчета погибших форм на световом микроскопе (мертвые клетки окрашиваются в синий цвет, живые клетки не окрашиваются). В эксперимент отбирают лейкосуспензии с жизнеспособностью клеток не менее 95%. На середину обезжиренной стеклянной поверхности наносят каплю приготовленного 2% раствора желатина, по бокам от нее на противоположные края наносят суспензию лейкоцитов суспензию эритроцитов. Помещают препарат во влажную камеру, насыщенную парами воды. Проводят процедуру силовой микроскопии на участке препарата, где расположена капля желатина, осуществляя подвод стандартного tipless кантилевера серии CSG 11/tipless в каплю. Изменяют область сканирования, перемещаясь на противоположный край препарата, где расположена лейкосуспензия. Под контролем оптической системы микроскопа выбирают участок с расположенными на нем отдельно лежащими лимфоцитами и осуществляют подвод tipless кантилевера к отдельному лимфоциту. После прилипания клетки к tipless кантилеверу переводят область сканирования на суспензию лейкоцитов. Регистрируют с помощью приготовленного биомеханического сенсора силовые кривые 30 лейкоцитарных клеток в режиме силовой спектроскопии. Затем изменяют область сканирования и передвигают к краю стеклянной поверхности, где располагается суспензия эритроцитов. Регистрируют снятие силовых кривых 30 эритроцитов. Рассчитывают силы адгезии с помощью программного обеспечения Nova.

Пример 1. Способ изготовления биомеханического сенсора для измерения сил адгезии в системе «лимфоцит-эритроцит», «лимфоцит-лейкоцит» крови больных лейкозом и здоровых людей во влажной камере в режиме атомно-силовой спектроскопии.

Производят забор крови больных острым лимфобластным лейкозом и здоровых пациентов в гепаринизированные вакуумные пробирки. Выделяют лейкосуспензию и эритроцитарную суспензию путем центрифугирования при 1500 об/мин в течение 5 мин, без отмывки в фосфатном буфере. Отбирают плазму и лейкоцитарное кольцо. Проверяют жизнеспособность лейкоцитов в тестах in vitro путем окраски клеточной суспензии 0,4% раствором трипанового синего в фосфатно-солевом буфере (рН 7,2-7,3) и последующего подсчета погибших форм на световом микроскопе (мертвые клетки окрашиваются в синий цвет, живые клетки не окрашиваются). Если в исследуемой лейкосуспензии жизнеспособность клеток составляет 95% и более, ее используют далее в эксперимента. Готовят 2% раствор желатина на дистиллированной воде, для этого взвешивают 4 г желатина и растворяют его при нагревании в 50 мл дистиллированной воды, не доводя до кипения. Приготовленный раствор остужают. На середину подготовленной стеклянной поверхности наносят каплю приготовленного 2% раствора желатина, по бокам от нее на один край наносят каплю суспензии лейкоцитов, на другой край – каплю суспензии эритроцитов. Помещают препарат во влажную камеру, насыщенную парами воды. Проводят процедуру силовой микроскопии на участке препарата, где расположена капля желатина, осуществляя подвод стандартного tipless кантилевера серии CSG 11/tipless в каплю. Изменяют область сканирования, перемещаясь на противоположный край препарата, где расположена лейкосуспензия. Под контролем оптической системы микроскопа выбирают участок с расположенными на нем отдельно лежащими лимфоцитами и осуществляют подвод tipless кантилевера к отдельному лимфоциту. После прилипания клетки к tipless кантилеверу переводят область сканирования на суспензию лейкоцитов. Регистрируют с помощью приготовленного биомеханического сенсора силовые кривые 30 лейкоцитарных клеток в режиме силовой спектроскопии. Затем изменяют область сканирования и передвигают стеклянную поверхность к краю, где располагается суспензия эритроцитов. Регистрируют снятие силовых кривых 30 эритроцитов. Рассчитывают силы адгезии с помощью программного обеспечения Nova. Результаты измерений представлены на фиг. 1 в таблице.

Как видно из представленных данных, сила адгезии между лимфоцитами и лейкоцитами во время лечения больных острым лимфобластным лейкозом возросла на 23% (р<0,05), а на стадии рецидива – на 117% (р<0,05) по сравнению с группой здоровых пациентов. При этом сила адгезии между эритроцитами и лимфоцитами не отличается от нормы во время лечения больных, но существенно возрастает при развитии рецидива болезни почти в 2 раза. Увеличение адгезивных свойств опухолевых клеток обусловлено большим количеством на их поверхности терминальных остатков сиаловых кислот в углеводных цепях О- и N-типов (Луцик М.М., Ященко А.М., Ковалишин В.И., Придатко О.Е., Стойка Р.С., Луцик М.Д. Гетерогенность популяции клеток лимфомы Nk/Ly и лейкоза L-1210 по углеводной структуре клеточной поверхности: иммуноцитохимический анализ связывания лектинов // Цитология и генетика. – 2011. - №2. – С. 3-9). Следовательно, предлагаемый способ позволяет получить объективные данные по адгезии клеток крови больных лейкозом, которые отражают подходы раннего обнаружения остаточной популяции лейкозных клеток после лечения, что позволит решить важную научно-практическую задачу, связанную с подбором адекватной программы лечения заболевания, а также прогнозировать и выявлять ранние цитологические признаки начинающейся декомпенсации ремиссионного состояния.

Предлагаемый способ изготовления биомеханического сенсора для измерения сил адгезии в системе «клетка-клетка» в режиме атомно-силовой спектроскопии технически прост, позволяет осуществлять манипуляции с нативными клетками в процессе проведения силовой спектроскопии, не изменяет свойств поверхности исследуемых образцов, позволяет получить объективные данные об адгезивных свойствах клеток в условиях ex vivo, приближенных к нативным. Предлагаемый способ может быть использован в общей физиологии и клинической диагностике для изучения адгезивных свойств поверхности нативных клеток, а также прогнозирования течения болезни и дальнейшей коррекции терапии.