Способ улучшения обмена веществ у сельскохозяйственных животных с использованием микрокапсулированного интестевита

Изобретение относится к животноводству и может быть использовано для улучшения обмена веществ и продуктивности у сельскохозяйственных животных.

Известен биопрепарат субалин, который используют в практике животноводства с целью повышения обмена веществ и профилактики желудочно-кишечных заболеваний у домашних животных. Препарат содержит пробиотические бактерии Bacillus Subtilis ВКПМ В-4759 и характеризуется высокой антагонистической активностью в отношении широкого спектра патогенных и условно патогенных микроорганизмов (Патент РФ №2035185. 20.05.1995 г., авт. В.В. Смирнов и др.).

Известен сухой пробиотик для жвачных животных руменолакт, который состоит из сухих концентратов бактерий Lactobacillus casei МБ ВКПМ В-4486, Lactobacillus acidophilus var. coccoideus M-86 ВКПМ В-4992 и Streptococcus lactis 3186 К12 ВКПМ-4989, взятых в равных массовых частях. Скармливание пробиотика молодняку жвачных животных стимулирует обмен веществ, повышает продуктивность и профилактирует дисбактериозы (Патент РФ №2063755. 20.07.1996 г., авт. Д.М. Исакова).

Существует пробиотическая добавка и способ ее получения, которую изготавливают путем смешивания биомассы бактерий Bacterius subtili В-2250 и/или Bacillus licheniformis В-2252 и вспомогательных веществ носителя-сорбента и влагоемкого наполнителя. В качестве носителя-сорбента добавка содержит аэросил гидрофильной марки А и гидрофобный марки AM, влагоемкого наполнителя - смолы-катиониты ионообменные марок КБ-4П-2 и КУ-2-8 ЧС. Добавку используют при изготовлении комбикормов для сельскохозяйственных животных, птиц и рыб. Применение кормовой добавки улучшает конверсию корма и общее состояние животных, увеличивает привесы и снижает падеж животных (Патент РФ №2252956. 10.08.2004 г., авт. Г.В. Кулаков и др.).

Известен способ скармливания пробиотика поросятам-сосунам, который предусматривает индивидуальное выпаивание поросятам пробиотика, содержащего культуры бифидобактерий, стрептококков и бактерий Bacillussubtilis, вместе с раствором, включающим отвар цикория обыкновенного, глюкозу и аскорбиновую кислоту. Ежедневное выпаивание раствора из расчета 5-10 мл на голову в сутки в течение 10-15 дней стимулирует полезную микрофлору кишечника и увеличивает среднесуточные приросты массы тела у поросят (Патент РФ №2410108. 27.01.2010 г., авт. Д.С. Учасов и др.).

Существует пробиотическая кормовая добавка для сельскохозяйственных птиц и пушных зверей. Данная добавка содержит жизнеспособные споры спорообразующих бактерий Bacillus subtilis ВКПМ В-2574, Bacillus cereus ВКПМ В-2492, Bacillus licheniformis Б-020, а также наполнитель и диспергатор. Кормовая добавка активизирует обмен веществ, повышает привесы, улучшает усвояемость корма, повышает плодовитость (Патент РФ №2458526. 20.08.2012 г., авт. Б.П. Струнин и др.).

Предложен способ повышения молочной продуктивности коров и качества молока, который предусматривает дачу с кормом пробиотика «ЭМ-Вита» в дозе 9,5-10,5 мл/гол один раз в день в течение 9-11 дней с дополнительным введением хитозана в дозе 1,9-2,1 мл/кг массы тела. Изобретение обеспечивает повышение среднесуточного удоя у коров, содержание в молоке, казеина, общего белка, жира, лактозы, а также улучшает показатели рубцового пищеварения (Патент РФ №2501548. 20.12.2013 г., авт. А.Р. Таирова и др.).

Существует композиция, которая включает пробиотик, относящийся к виду Lactobacillus rhamnosus. Данная композиция используется для нормализации патологического липидного профиля (Патент РФ №2497536. 10.11.2013 г., авт. К. Каяндер и др.).

Известен способ повышения продуктивности и сохранности поросят, включающий введение в комбикорм ежедневно кормовых добавок в виде цеолита и пробиотика провагена из спорообразующих бактерий Bacillus subtillis и глюкозы. Осуществление способа обеспечивает повышение перевариваемости сухого вещества рациона и прирост живой массы поросят (Патент РФ №2538379. 10.01.2015 г., авт. А.С. Козлов и др.).

Общим недостатком для всех приведенных выше способов является то, что большая часть (70-80%) использованных в них пробиотических бактерий, попадая в кислую среду желудка, погибает. Поэтому дозу пробиотических препаратов при скармливании животным значительно завышают.

В качестве прототипа выбран способ стимуляции физиолого-биохимического статуса и репродуктивных качеств у свиноматок с использованием пробиотика интестевита (Учасов Д.С., автореф. дисс. докт. биол. наук «Физиолого-биохимические аспекты повышения эффективности применения пробиотиков в промышленном свиноводстве» - Курск, 2014 г.). Данный способ предусматривает скармливание свиноматкам в течение 20 дней дополнительно к основному рациону препарат интестевит из расчета 1,7 г (5 доз) на одну голову в день.

Недостатком указанного способа является то, что после попадания в желудок животных большая часть пробиотических бактерий (Bifidobacterium globusum, Bacillus subtilis) под действием соляной кислоты погибает и только 20-30% их поступает в кишечник. Это значительно снижает биологическую эффективность пробиотического препарата и требует завышения доз для применяемых препаратов.

Техническая задача патентуемого изобретения заключается в разработке нового способа улучшения обмена веществ, что способствует повышению мясной продуктивности у сельскохозяйственных животных, путем скармливания микрокапсулированнго пробиотика интестевита, а также уменьшение расхода пробиотика при обработке животных.

Техническим результатом, обеспечивающим решение поставленной задачи изобретения, является улучшение обмена веществ и повышение мясной продуктивности (привесов) у сельскохозяйственных животных путем применения микрокапсулированного интестевита, а также уменьшение расхода используемого пробиотика при обработке животных.

Результат достигается тем, что животным с рационом скармливается микрокапсулированный интестевит. Наличие микрокапсул предохраняет пробиотические бактерии от разрушения в кислой среде желудка, в результате они беспрепятственно поступают в кишечник, где под действием щелочной среды микрокапсулы разрушаются, пробиотические бактерии выходят в полость кишечника и активно размножаются. В процессе жизнедеятельности в кишечнике пробиотические бактерии синтезируют биологически активные вещества: ферменты, аминокислоты, витамины и др. Эти вещества оказывают положительное влияние на обмен веществ, естественную резистентность и продуктивные качества животных.

Пример 1. Научно-производственные испытания разработанного способа проводили в условиях свиноводческого комплекса «ЗАО Свинокомплекс Ивановский» Белгородской области. В эксперименте был использован микрокапсулированный интестевит по ранее разработанному нами способу (патент РФ на изобретение №2544169, 2015 г., Сеин О.Б., Кролевец А.А., Николаенко А.Г.). Для получения микрокапсулированного пробиотика 100 мг интестевита растворяли в 1 мл диоксана, затем диспергировали полученную смесь в раствор натрий карбоксиметилцеллюлозы в ацетоне, содержащий 300 мл указанного полимера, в присутствии 0,01 г препарата Е472с при перемешивании. К полученной суспензии приливали 1 мл дистиллированной воды, отфильтровывали и сушили при комнатной температуре. Получили белый с желтоватым оттенком порошок - 0,356 г.

Объектом исследований являлись свиньи 4-месячного возраста крупной белой породы. Было сформировано три группы по 10 голов в каждой.

Свиньи 1 опытной группы с основным рационом получали микрокапсулированный препарат 3,5 г (содержит 1,0 г интестевита) на одну голову 1 раз в день в течение 10 дней подряд. Свиньи 2 опытной группы получали некапсулированный интестевит 2,0 г по той же схеме, что и животные 1 опытной группы. Свиньи 3 группы являлись контрольными, им препараты не скармливали.

Животные всех групп содержались в одном помещении и получали одинаковый рацион, составленный по общепринятым нормам.

У опытных и контрольных свиней брали кровь до начала эксперимента, на 15 и 30 дни эксперимента. В крови определяли общие гематологические показатели (СОЭ, гематокрит, содержание эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина), с использованием общепринятых методик и гематологического анализатора (Abacus junior vet). Концентрацию в крови общего белка, глюкозы, общих липидов, общего кальция, неорганического фосфора, витаминов А и С устанавливали с использованием наборов реактивов «Био-Ла-Тест» фирмы «Лахема» и биохимического анализатора ILab-650.

После окончания эксперимента (31 день) из каждой группы было убито по 3 головы. После убоя были отобраны пробы печени, длиннейшей мышцы спины и тонкого отдела кишечника, в тканях которых определяли содержание общего азота на приборе Къельтек. Отдельно в тканях длиннейшей мышцы спины исследовали содержание свободных аминокислот с использованием автоматического анализатора (ААА-400, Чехия).

Результаты исследований показали, что абсолютная масса тела и среднесуточные ее приросты наиболее высокими были у свиней 1 опытной группы (таблица 1).

При исследовании общих показателей крови было установлено (таблица 2), что у свиней, получавших микрокапсулированный интестевит гематокрит, содержание эритроцитов и гемоглобина находилось на более высоком уровне, чем у животных 2 опытной и 3 контрольной групп.

Лабораторный анализ биохимических компонентов крови показал (таблица 3), что у свиней 1 опытной группы содержание глюкозы, общего кальция, витаминов А, Е, и С на 30 день эксперимента было достоверно (р<0,05) больше по сравнению с контрольными животными. При этом содержание общих липидов и неорганического фосфора, наоборот, было ниже, чем в контроле.

У свиней, получавших микрокапсулированный интестевит, в тканях длиннейшей мышцы, печени и стенке тонкого отдела кишечника, содержалось достоверно больше (р<0,05) белкового азота, чем у животных 3 контрольной групп (таблица 4).

Также было установлено, что в тканях длиннейшей мышцы спины у свиней, получавших микрокапсулированный интестевит, суммарное содержание аминокислот было достоверно (р<0,05) больше, чем у свиней 2 опытной группы и контрольных животных (таблица 5). При этом увеличение содержания аминокислот происходило как за счет незаменимых (треонин, валин, метионин, лейцин, лизин, гистидин), так и заменимых аминокислот (глютаминовая кислота, глицин, аланин). У свиней, получавших некапсулированный интестевит достоверные различия (р<0,05) по сравнению с контролем были выявлены только в содержании незаменимых аминокислот.

Пример 2. Второй научно-производственный эксперимент по исследованию микрокапсулированного интестевита проводили в условиях учебно-опытного хозяйства Курской ГСХА имени И.И. Иванова.

Объектом исследований являлись бычки-аналоги на откорме черно-пестрой породы. Было сформировано три группы из 9-месячных животных по 10 голов в каждой.

Бычкам 1 опытной группы индивидуально с небольшой порцией комбикорма скармливали микрокапсулированный препарат 8,7 г (содержит 2,5 г интестевита) на одну голову 1 раз в день в течение 10 дней подряд. Бычки 2 опытной группы получали некапсулированный интестевит 5,0 г по той же схеме, что и животные первой опытной группы. Бычки 3 группы являлись контролем и препараты не получали. Животные всех групп содержались в одном помещении и получали одинаковый рацион, сбалансированный по питательным, минеральным и витаминным компонентам.

Во время проведения эксперимента учитывали общее состояние животных, аппетит, наличие жвачки, сокращения рубца, измеряли температуру тела. У всех подопытных бычков определяли абсолютную массу тела и среднесуточные привесы.

В период эксперимента у бычков всех групп брали кровь до начала эксперимента, на 15 и 30 дни эксперимента. В крови определяли общие гематологические и биохимические показатели с использованием методик, описанных в примере 1.

Определение весовых параметров показало, что наиболее высокая абсолютная масса тела и среднесуточные приросты массы были у бычков 1 опытной группы (таблица 6).

При исследовании общих гематологических показателей было установлено, что как у опытных, так и у контрольных животных они находились в пределах физиологических границ (таблица 7). Однако у бычков, получавших препараты, содержание эритроцитов на 30 день эксперимента было достоверно (р<0,05) больше, чем у контрольных животных и бычков 2 опытной группы.

Исследования биохимических компонентов крови показали (таблица 8), что содержание общего белка, глюкозы, общего кальция, витаминов А и С у бычков, получавших микрокапсулированный интестевит, было достоверно (р<0,05) больше по сравнению с контрольными животными. У животных, получавших некапсулированный интестевит, достоверное увеличение отмечалось только в содержании глюкозы и витамина А.

Результаты экспериментов, представленных в примерах 1 и 2, свидетельствуют о том, что микрокапсулированный интестевит оказывает выраженное влияние на обмен веществ и продуктивные качества сельскохозяйственных животных. При этом расход интестевита во время обработки животных уменьшается почти в 2 раза. Учитывая результаты предлагаемого способа, его можно рекомендовать к широкому применению в практике животноводства.