Результат интеллектуальной деятельности: Способ профилактики расстройств пищеварения у новорожденных телят

Предлагаемое изобретение относится к ветеринарии и может быть применено для предупреждения диарейного синдрома у новорожденных телят.

Известны способы для профилактики с использованием пробиотиков в качестве иммуностимуляторов с целью предупреждения расстройств пищеварения у молодняка крупного рогатого скота [Воробьев, А.В. Использование комплексного пробиотического препарата в профилактике и лечении болезней желудочно-кишечного тракта телят / А.В. Воробьев, А.И. Фадеев, А.В. Савинков и др. // Мат-лы междунар. научн.-практ. конф. - Новосибирский ГАУ, 2004 - С. 276; Жирков, И.Н. Применение пробиотика «РАС» для коррекции дисбактериозов у телят / И.Н. Жирков // Ветеринария - 1999. - №4. - С. 40-42].

Необходимость специфической профилактики отмечают В.А. Мищенко и соавт. (2005) в работах по изучению влияния лактогенного иммунитета на возникновение желудочно-кишечных расстройств, проявляющихся диареей. Учеными доказана эффективность иммунизации глубокостельных коров инактивированными вакцинами, что приводит к повышению концентрации вирусоспецифических антител в молозиве, достаточной для предупреждения диареи, провоцируемой рота- и коронавирусами [Мищенко, В. А. Экологические особенности заболеваний пищеварительной системы новорожденных телят / В.А. Мищенко, Д.К. Павлов, В.В. Думова // Ветеринарная патология. - 2005. - №3. - С 34 - 38.; Мищенко, В.А. Меры борьбы с диареями новорожденных телят/ В.А. Мищенко, Н.А. Яременко, Д.К. Павлов и др. // Ветеринария. - 2002. - №4. - С. 16-19]. Наряду с перечисленными методами предупреждения факторных инфекций существует биологический способ борьбы с аэрозольным применением бактериофагов в присутствии животных, сочетанный эффект которого обеспечивается воздействием на патогенные бактерии не только в организме животного, но и в окружающей среде [Наумов, М.М. Секреторно-двигательная функция сычуга новорожденных телят в норме и при патологии: дис.…д. вет. наук / М.М. Наумов. - Курск, 2000. - 247 с].

Широким профилактическим эффектом обладает аэроионизация воздуха [Дементьев, Е.П. Адаптационные способности организма телят при искусственной ионизации воздуха / Е.П. Дементьев, Е.В. Цепелева //Успехи совр. естеств. - 2010. - №4. - С. 72-73.; Лободин, П.В. Результаты комплексного применения аэроионизации и биологически активных продуктов пчеловодства при выращивании телят / П.В. Лободин, Е.В. Цепелева, В.А. Казадаев и др. // Изв-я Оренбург. Гос. аграр. ун-та. - 2012. - №1-1. - Т.33. - С. 252-253.; Цепелева, Е.В. Влияние аэроионизации на естественную резистентность и иммунный статус телят, вакцинированных против сальмонеллеза: автореф. дис.…канд. вет. наук / Е.В. Цепелева. - Уфа, 2005 - 24 с.; Цепелева, Е.В. Гигиеническая целесообразность применения аэроионизации при профилактике инфекционных болезней телят / Е.В. Цепелева, П.В. Лободин, Е.П. Дементьев // Изв-я Оренбург. Гос. аграр. ун-та-2012. - №1-1. - Т.33. - С. 90-92], направленная на улучшение санитарного уровня микроклимата в животноводческих помещениях и повышение неспецифической резистентности новорожденных телят.Основными принципами указанных выше методов является подавление условно патогенной микрофлоры в животноводческих помещениях, исключение вирулентности и патогенности, недопущение накопления токсичных продуктов ее жизнедеятельности [Джупина, СИ. Эпизоотический процесс и его контроль при факторных инфекционных болезнях / С.И. Джупина. - М., 2002. - 212 с,; Джупина, С.И. Этиология и профилактика массовых желудочно-кишечных болезней телят / С.И. Джупина // Ветеринарная патология. - 2003. - №2. - С. 28-30].

Таким образом, своевременное установление причин и комплексный подход в профилактике желудочно-кишечных болезней новорожденных телят, является гарантией высокой сохранности молодняка и успешного развития скотоводства. Однако, вследствие полифакторности возникновения диарейного синдрома у вышеперечисленных решений по предупреждению расстройств пищеварения у новорожденных телят не всегда возможно учесть ряд причин возникновения указанной патологии в производственных условиях молочно-товарных комплексов.

Задача изобретения: повышение эффективности профилактических мероприятий при расстройстве пищеварения у новорожденных телят.

При решении поставленной задачи необходимо:

1. Расширение спектра антимикробного действия препаратов.

2. Профилактика развития эндотоксического действия за счет достижения более полного эффекта при одновременном введении двух препаратов.

3. Выраженное антидиарейное действие.

4. Предупреждение обезвоживания организма.

5. Минимизация негативного влияния на нормальную микрофлору кишечника.

6. Длительная санация воздуха телятников профилакториев.

Исходя из вышеизложенных требований, нами были разработаны новый микрокапсулированный препарат полигексаметиленгуанидина гидрохлорида (ПГМГ ГХ) в пектине и способ санации воздуха животноводческих помещений, сочетанное применение которых направлено на предупреждение диарейного синдрома у новорожденных телят в производственных условиях.

ПГМГ ГХ обладает биоцидным действием против грамположительных и грамотрицательных бактерий (включая микобактерии туберкулеза), различного рода грибов (плесневых, дрожжеподобных, дерматофитов и др.). ПГМГ гидрохлорид одновременно воздействуют не только на аэробную и анаэробную микрофлору, но и подавляет вирусы. Гуанидиновые соединения широко распространены в природе и находят применение в качестве биологически активных веществ: лекарств, антисептиков, фунгицидов (К.М. Ефимов, 2005; Е.В. Баскаков, 2007; И.А. Коломейцев, 2010; М.Н. Павлов, 2012; И.А. Брусенцев, 2015 и др.).

Пектин известен своими разнообразными биологически ценными свойствами: является сорбентом, освобождая организм новорожденного теленка от эндотоксинов, при этом благодаря своей желеобразной структуре препятствует обезвоживанию организма, оказывает стимулирующее действие на обмен веществ, повышает неспецифическую резистентность организма здоровых животных, оказывает противовоспалительное действие, является перспективным антимикробным средством, не оказывающим негативного влияния на нормальную микрофлору кишечника (Э.Н. Ямаев, 2002; И.А. Сычев, 2008).

Новиков А.И., Потиевский Э.Г., Rabbani G.H. и др. отмечают, основываясь на данных экспериментальных исследований и клинических наблюдений, еще одно новое качество пектина - выраженное антидиарейное действие.

Для получения микрокапсулированного полигексаметиленгуанидина гидрохлорида (ПГМГ ГХ) использовали в качестве оболочки микрокапсул низкоэтерифицированный или высокоэтерифицированный яблочный или цитрусовый пектин, при этом к 3 г суспензии пектина в бензоле прибавляли 0,01 г Е472с в качестве поверхностно-активного вещества, полученную смесь перемешивали на магнитной мешалке, добавляли 1 г ПГМГ ГХ, затем добавляли 5 мл четыреххлористого углерода в случае использования низкоэтерифицированного пектина или 3 мл четыреххлористого углерода в случае использования высокоэтерифицированного пектина, полученную суспензию микрокапсул отфильтровывали, промывали четыреххлористым углеродом и сушили. Получали белый или с кремовым оттенком порошок.

Микрокапсулированный препарат дается в утреннюю и вечернюю выпойку с молозивом-молоком за два приема в дозе 2 мг на 10 кг массы, срок применения 10 суток, начиная со второго дня жизни.

Помимо диарейного синдрома также крайне острой проблемой является условно патогенная микрофлора в воздухе профилакториев, это особенно актуально для новорожденных телят, так как массовые отелы традиционно приходятся на зимне-весенний период, когда в животноводческих помещениях устанавливается низкая температура и высокая влажность. Данные условия способствуют активному развитию условно-патогенной микрофлоры в воздухе животноводческих помещений. Для решения этой проблемы проводят санацию помещений с использованием скипидара и однохлористого йода двухфазно: в активной фазе одномоментно с интервалом в 15 дней с использованием тепловой энергии, а затем в пассивной - со стабильным и длительным испарением скипидара, обеспечивая таким образом замкнутый цикл до следующей активной фазы. Для проведения санации устанавливают в помещении телятника-профилактория объемом 70 м камеру испарения с теплоотражающим полом и наливают в нее 500 мл скипидара, в него устанавливают стеклянную емкость с 200 мл однохлористого йода, в который помещают алюминиевую проволоку - 5 г из расчета 50 г на литр однохлористого йода. В процессе экзотермической реакции с выделением паров йода и хлора при температуре 80-90°С тепло равномерно распространяется по камере, обеспечивая активное испарение скипидара. Активная фаза равна длительности химической реакции. Затем наступает пассивная фаза с постепенным испарением скипидара. Обеспечивается непрерывность бактерицидного и бактериостатического воздействия на общую микробную загрязненность воздуха.

Примеры конкретного применения.

Были проведены исследования в производственных условиях молочного товарного комплекса ООО «Агрофирма «Горняк» Железногорского района Курской области, объектом исследований был молодняк крупного рогатого скота в возрасте от рождения и до 10 дней. Для опыта было отобрано 40 новорожденных телят, черно-пестрой породы обоих полов, средней массой тела 39 кг, подобранных методом случайной выборки.

На первом этапе проводилось исследование общих клинических и гематологических показателей новорожденных телят, у которых в течение 10 дней не наблюдалось расстройства пищеварения, в ходе которых было набрано 20 животных.

На втором этапе было сформировано две группы животных по 10 голов в каждой, которые содержались в изолированных помещениях телятника-профилактория. Опытная группа находилась в условиях профилактических мероприятий, включающих применение микрокапсулированного ПГМГ ГХ в пектине (пат. РФ. №2561586) и санацию воздуха в животноводческих помещениях (пат. РФ №2561531) с целью предупреждения диарейного синдрома [1, 2]. Микрокапсулированный препарат задавался в утреннюю и вечернюю выпойку с молозивом-молоком за два приема в дозе 2 мг на 10 кг массы, срок применения 10 суток, начиная со второго дня жизни. Телятам контрольной группы препарат не давали, и данные животные содержались в стандартных условиях телятника профилактория на протяжении всего эксперимента. Критериями эффективности профилактических мероприятий служили: отсутствие в опытной группе новорожденных диарейного синдрома, и оптимальные клинико-физиологические и гематологические показатели.

Во всех группах велось постоянное клиническое наблюдение, определение массы тела производили сразу после рождения. Кровь для гематологических исследований брали у новорожденных телят из яремной вены в утренние часы до кормления, с использованием вакуумных систем «S-Monovette». Для оценки были выбраны изучаемые показатели первых, седьмых и десятых суток жизни.

Показатели крови исследовались с помощью гематологического анализатора Abacus junior VET производства (Diatron®, Vienna, Austria) на базе кафедры физиологии и химии им проф. А.А Сысоева Курской ГСХА.

Собственные исследования. В связи с тем, что новорожденные телята рождаются с разным уровнем функционирования морфофункциональных структур организма, нами были изучены в возрастной динамике фоновые клинические и гематологические показатели в условиях МТК «Агрофирма «Горняк».

Для анализа общего клинико-физиологического состояния новорожденных телят в производственных условиях проводили взвешивание, клинический осмотр, измерение температуры тела, определяли частоту дыхания и пульса. Подопытные телята имели среднее телосложение, удовлетворительную упитанность, нормальную эластичность кожи и равномерный волосяной покров, холодное и влажное носовое зеркало, слизистые оболочки и конъюнктива глаз бледно-розового цвета, подчелюстные лимфатические узлы безболезненные, упругие, гладкие, подвижные.

Как видно из таблицы 1, у новорожденных телят температура тела в первый день жизни составляла 39,01±0,04°С, ЧДД 38,7±1,5 движ./мин., частота сердечных сокращений 132,5±7,1 уд./мин., живая масса при рождении в среднем составляла 39,28±0,15 кг.

У десятисуточных телят отмечалось снижение данных показателей, за исключением живой массы, так, ректальная температура достоверно снижалась до 38,73±0,04°С (Р<0,001), ЧДД 32,6±2,6 движ./мин, частота сердечных сокращений 103,4±4,6 уд./мин. Прирост живой массы в среднем составил 1,47 кг.

Параметры крови, характеризующие количество эритроцитов, лейкоцитов, концентрацию гемоглобина и гематокритную величину у здоровых новорожденных телят приведены в таблице 2.

Данная таблица 2 показывает, что количество эритроцитов (RBC) крови телят суточного возраста составляет 8,03±0,61 10¹²/л, на седьмые и десятые сутки отмечается незначительное снижение их количества и составляет соответственно 7,78±0,86 10¹²/л и 7,81±0,65 10¹²/л. Уровень лейкоцитов крови (WBC) телят суточного возраста составляет 7,83±0,54 10⁹/л, на седьмые и десятые сутки отмечается увеличение количества лейкоцитов и составляет соответственно 9,95±0,81 10⁹/л и 10,14±1,42 10⁹/л. Увеличение лейкоцитов в крови происходит после приема молозива, и стабилизация их количества в крови наступает на 7-10 сутки после рождения, что подтверждается результатами других авторов (3). Гемоглобин (HGB) в крови телят суточного возраста составляет 116±4,14 г/л, на седьмые и десятые сутки отмечается снижение уровня гемоглобина до 108,43±3,68 г/л и 109,18±2,4 г/л соответственно. Гематокрит (НТС), в первые сутки жизни у новорожденных телят составлял в среднем 36,31±2,87%, на седьмые и десятые сутки отмечалось снижение гематокритной величины в среднем до 32,11±1,85% и 33,79±1,28% соответственно.

Полученные общие клинические и гематологические показатели биометрически обработаны, проанализированы, характеризуют обследованных телят, как нормотрофиков и согласуются с данными других исследователей [4, 5, 6, 7].

Результаты наших исследований по профилактическому применению микрокапсулированного ПГМГ ГХ в пектине новорожденным телятам представлены в таблицах 3 и 4.

Сравнивая показатели новорожденных телят контрольной группы и опытной в условиях применения микрокапсулированного ПГМГ ГХ в пектине (таблица 3), следует отметить, что изучаемые показатели в представленных группах находились в пределах физиологических границ и существенно не отличались от показателей группы клинически здоровых новорожденных телят.Однако живая масса телят в контрольной группе, где у всех животных отмечался диарейный синдром, была ниже на десятые сутки исследования в сравнении с опытной группой в среднем на 1,1 кг.

Параметры крови, характеризующие количество эритроцитов, лейкоцитов, концентрацию гемоглобина и гематокритную величину у новорожденных телят, получавших с профилактической целью микрокапсулированный полигексаметиленгуанидина гидрохлорид в пектине, приведены в таблице 4.

Как видно из таблицы 4, у телят в опытной и контрольной группе, на протяжении эксперимента изучаемые показатели находились в границах нормы, однако количество эритроцитов в контроле было выше в среднем на 0,87-1,1 10¹²/л., на седьмые и десятые сутки в контрольной группе отмечалось повышение уровня лейкоцитов в среднем до 10,1±0,65 10⁹/л и 10,24±1,21 10⁹/л, соответственно, в сравнении с опытной группой и клинически здоровыми животными, уровень гемоглобина достоверно не отличался во всех трех группах, хотя и имел более высокие показатели в контроле на всем протяжении эксперимента, гематокритная величина в контроле была выше, в среднем на 4%, чем у животных опытной группы в изучаемые периоды жизни.

Клинико-физиологическая оценка изучаемых показателей в представленных группах выявила следующие существенные различия между ними: живая масса телят в контрольной группе, где у всех животных отмечался диарейный синдром, была ниже на десятые сутки исследования в сравнении с опытной группой в среднем на 1,1 кг. Из гематологических показателей следует отметить гематокритную величину, характеризующую реологические свойства крови, которая в контрольной группе, была выше в среднем на 4%, что свидетельствует о незначительной гемоконденсации, чем в опытной группе, находившейся в условиях профилактических мероприятий.

Сочетание активных компонентов - ядра и оболочки микрокапсул, суммирование их биологически ценных свойств, положительно влияющих на организм телят опытной группы, и санация воздуха телятника-профилактория, позволили уменьшить факторы, провоцирующие развитие условно патогенной микрофлоры в организме животных и в окружающей их среде, предупредить расстройства пищеварения у молодняка крупного рогатого скота.

Источники информации:

1. Кролевец, А.А. Пат. 2561586 РФ. Способ получения микрокапсул Биопага-Д в пектине / А.А. Кролевец, М.М. Наумов, И.А. Богачев, И.А. Брусенцев, Н.М. Наумов - Приоритет от 12.02.2014, опубл. 27.08.2015, Бюл. №24.

2. Наумов, М.М. Пат. 2561531 РФ. Способ санации воздуха животноводческих помещений / М.М. Наумов, Н.М. Наумов, И.А. Брусенцев. - Приоритет от 20.02.2014; опубл. 27.08.15, Бюл. №24.

Шахов, А.Г. Методическое пособие по диагностике и профилактике нарушений антенатального и интранатального происхождения у телят / А.Г. Шахов, Ю.Н. Алехин, С.В. Шабунин, Л.Ю. Сашнина, Д.В. Федосов, Т.А. Ерина, О.В. Пригородова, И.Р. Сидельникова, А.В. Голубцов // Воронеж, 2013,. - 92 с.

4. Ковалев, П.С. Киселенко // Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 100-летию со дня рождения Заслуженного деятеля науки РСФСР, доктора ветеринарных наук, профессора Кабыша Андрея Александровича - СПб. 2017. С. 235-240.

5. Мерзленко Р.А. Профилактика заболеваний новорожденных телят с применением препарата ЭВЛ-SE ФОРТЕ/ Р.А. Мерзленко, Н.В. Ковалев, С.П. Изменение показателей крови при диарее телят / С.П. Кавешникова, А.А. Степанов, С.А. Стрельников//В сборнике: Проблемы и пути развития ветеринарии высокотехнологичного животноводства Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 45-летию ГНУ ВНИВИПФиТ Россельхозакадемии. 2015. С. 303-308.

6. Москвина, А.С. Изменение морфофизиологических показателей крови телят с возрастом и в процессе вакцинации / А.С. Москвина // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2012. №1. С. 28-30.

7. Науменко, П.А. Гематологические показатели крови у телят молочного периода выращивания / П.А. Науменко, Е.А. Комкова, Х.М. Зайналабдиева, Д.Л. Арсанукаев // Вестник Орловского государственного аграрного университета. 2013. Т. 40. №1. С. 122-125.

*-Р≤0,05 по отношению к первым суткам

**-Р≤0,01 по отношению к первым суткам

***-Р≤0,001 по отношению к первым суткам

*-Р≤0,05 по отношению к контрольной группе

**-Р≤0,01 по отношению к контрольной группе

***-Р≤0,001 по отношению к контрольной группе