Способ контроля обработки рук кожными антисептиками

Изобретение относится к области эпидемиологии, микробиологии и дезинфектологии и может быть использовано для контроля обработки рук кожными антисептиками.

В системе мероприятий по обеспечению санитарно-эпидемиологического благополучия в медицинских организациях важная роль принадлежит обеззараживанию рук медицинского персонала, которые являются не только фактором передачи различных патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, но и способны длительно сохранять жизнеспособность на коже рук с опасностью к распространению. Поэтому подходы к определению профилактических мер, направленных на предотвращение передачи микробов через руки, связаны с их обеззараживанием - обработкой рук медицинского персонала кожными антисептиками.

Известен способ бактериологического контроля эффективности обработки рук антисептиками, заключающийся в следующем. Производят смывы с рук персонала стерильной марлевой салфеткой размером 5 × 5 см, смоченной в нейтрализаторе. Марлевой салфеткой тщательно протирают ладони, околоногтевые и межпальцевые пространства обеих рук. После отбора проб марлевую салфетку помещают в широкогорлые пробирки или колбы с физиологическим раствором и стеклянными бусами, встряхивают в течение 10 мин. Жидкость засевают глубинным способом на 2 чашки Петри с мясопептонным агаром (по 0,5 мл) и в 2 пробирки с 0,5 %-м сахарным бульоном (по 1 мл). Посевы инкубируют при температуре 37°С в течение 48 ч.

Отсутствие роста патогенных и условно патогенных бактерий свидетельствует об эффективности обработки. («Методы санитарно-бактериологических исследований объектов окружающей среды, воздуха и контроля стерильности в лечебных организациях», Методические указания МУК 4.2.2942-11, с. 11).

Основным недостатком известного способа является большая длительность анализа (более 2-х суток), что затрудняет оперативный контроль. В то же время, своевременная обработка рук в течение рабочей смены кожными антисептиками, зарегистрированными в установленном порядке, до минимума снижает риски передачи патогенных микроорганизмов.

Предлагаемый способ направлен на решение проблемы и достижение технического результата, состоящего в упрощении процедуры контроля обработки рук кожными антисептиками, снижении риска распространения патогенных микроорганизмов в медицинских организациях, на предприятиях пищевой и перерабатывающей промышленности и коммунально-бытового обслуживании.

Технический результат достигается описываемым способом контроля обработки рук кожными антисептиками, включающим сбор смыва с рук испытуемого и обработку смыва реактивами, причем перед обработкой рук кожным антисептиком в антисептик добавляют 0,2 – 1,0% масс. диметилглиоксима, смыв с рук испытуемого берут ватным тампоном, смоченным спиртом, обработку его осуществляют 10%-ным раствором гидроксида натрия и 0,4%-ным раствором ацетата никеля и по цвету окрашивания контролируют качество обеззараживания рук.

Способ контроля обработки рук антисептиками основан на взаимодействии в щелочной среде солей никеля Ni²⁺ с находящимся в составе кожного антисептика диметилглиоксимом. Образующийся при этом бис(диметилглиоксимато)никель(II) имеет характерную розовую окраску, а при большом количестве никеля – красную. Изменение окраски свидетельствует об обработке рук кожным антисептиком.

Обработка рук персоналом в течение рабочей смены должна осуществляться многократно, что является важным фактором снижения риска распространения патогенной микрофлоры. Так, персонал медицинской организации в среднем должен обрабатывать руки не менее 10 раз в смену, что происходит не всегда.

Описанный способ позволяет осуществлять контроль обработки рук кожными антисептиками на спиртовой основе (содержание этанола, 2-пропанола и/или 1-пропанола должно быть не менее 45% масс.), в состав которых введен диметилглиоксим.

Для осуществления способа используют следующие реактивы:

- Этанол 70%-ный водный раствор.

- Ацетат никеля тетрагидрат 0,4%-ный водный раствор.

- Натрия гидроксид 10%-ный водный раствор.

- Ватные тампоны из гигиенической ваты.

Способ осуществляют следующим образом.

На ватный тампон, с площадью поверхности около 10 см², наносят пипеткой Пастера 3 мл 70 %-ного раствора этанола.

Смоченным спиртом тампоном протирают тыльную и внутреннюю стороны кистей обеих рук испытуемого. Тампон помещают в центрифужную пробирку и плотно закрывают крышку. Открывают пробирку, содержащую тампон, последовательно разными пипетками добавляют 1 мл 10%-ного раствора гидроксида натрия и 3 мл 0,4%-ного раствора ацетата никеля. Плотно закрывают пробирку крышкой и встряхивают, чтобы полностью смочить тампон растворами.

При появлении на ватном тампоне розового или красного окрашивания результат теста считают положительным. Это означает, что руки испытуемого были обработаны кожным антисептиком.

Если тампон имеет едва заметное светло-зеленое окрашивание, то результат теста отрицательный.

Изобретение иллюстрируется следующими примерами.

Пример 1

Руки обрабатывают 3 см³ кожного антисептика №1 (состав представлен в таблице 1) с введенными с него дополнительно 0,3% диметилглиоксима, при этом раздражающего эффекта не наблюдается. Сбор смыва с рук осуществляют ватным тампоном, смоченным этанолом. Тампон помещают в пробирку и добавляют в пробирку 1 мл 10%-ного водного раствора гидроксида натрия и 3 мл 0,4%-ного водного раствора ацетата никеля, при этом сразу образуется розовая окраска, свидетельствующая об обработке рук антисептиком.

Таблица 1. Состав антисептика №1

Если проводить смыв с рук в течение 2 часов после обработки, реакция остается положительной. В то же время, через 2,5 часа розовое окрашивание на ватном тампоне не появляется.

При проведении нескольких смывов с рук, обработанных кожным антисептиком №1 с добавлением 0,3 % диметилглиоксима только один раз, интенсивное розовое окрашивание не появляется на ватном тампоне уже после второго смыва, и не появляется вообще при последующих.

Пример 2

Руки обрабатывают 3 см³ кожного антисептика №2 (состав представлен в таблице 2), с введенными дополнительно 0,5% диметилглиоксима в состав кожного антисептика, при этом раздражающего эффекта не наблюдается. Сбор смыва с рук осуществляют ватным тампоном, смоченным этанолом, тампон со смывом помещают в пробирку и добавляют в нее 1 см³ 10 %-ного водного раствора гидроксида натрия и 3 см³ 0,4%-ного водного раствора ацетата никеля, при этом сразу образуется розовая окраска, свидетельствующая об обработке рук антисептиком.

Таблица 2. Состав антисептика № 2

Если проводить смыв с рук в течение 2,5 часов после обработки, реакция остается положительной. В то же время, через 3 часа розовое окрашивание на ватном тампоне не появляется.

При проведении нескольких смывов с рук, обработанных кожным антисептиком №2 с добавлением 0,5 % диметилглиоксима только один раз, интенсивное розовое окрашивание не появляется на ватном тампоне уже после второго смыва, и не появляется вообще при последующих.

Пример 3

Руки обрабатывают 3 см³ кожного антисептика №3 (состав представлен в таблице 3), с введенными в него дополнительно 0,5 % диметилглиоксима, при этом раздражающего эффекта не наблюдается. При сборе смыва с рук ватным тампоном, смоченным этанолом, и добавлении на него 1 см³ 10%-ного водного раствора гидроксида натрия и 3 см³ 0,4 %-ного водного раствора ацетата никеля сразу образуется розовая окраска, свидетельствующая об обработке рук антисептиком.

Таблица 3. Состав антисептика №3

Если проводить смыв с рук в течение 2 часов после обработки, реакция остается положительной. В то же время, через 2,5 часа розовое окрашивание на ватном тампоне не появляется.

При проведении нескольких смывов с рук, обработанных кожным антисептиком №3 с добавлением 0,3 % диметилглиоксима только один раз, интенсивное розовое окрашивание не появляется на ватном тампоне уже после второго смыва, и не появляется вообще при последующих.

Таким образом, заявленный способ позволяет упростить процедуру контроля обработки рук кожными антисептиками, включающими в свой состав диметилглиоксим, что позволит на месте контролировать частоту обработки рук персонала, обеспечить своевременную обработку рук в течение рабочей смены кожными антисептиками и, в результате, снизить до минимума риски передачи патогенных микроорганизмов.