Результат интеллектуальной деятельности: ЦИТОТОКСИЧЕСКИЕ ПОЛУСИНТЕТИЧЕСКИЕ ПРОИЗВОДНЫЕ МАКРОЛИДНОГО АНТИБИОТИКА ОЛИГОМИЦИНА А И СПОСОБ ИХ ПОЛУЧЕНИЯ

Область техники, к которой относится изобретение

Изобретение относится к фармацевтической промышленности и касается новых производных ингибитора F₀F₁ АТФ-синтаз - макролидного антибиотика олигомицина А - и способа их получения.

Уровень техники

Макролидные антибиотики семейства олигомицинов, механизм действия которых связан с подавлением активности F₀F₁ АТФ-синтаз, являются природными веществами, проявляющими цитотоксическое действие в отношении опухолевых клеток, грибов и бактерий (Salomon A.R., Voehringer D.W., Herzenberg L.A., Khosla C. Understanding and exploiting the mechanistic basis for selectivity of polyketide inhibitors of F₀F₁-ATPase. Proc Natl Acad Sci USA. 2000, 97(26):14766-14771; Senior AE, Nadanaciva S, Weber J. The molecular mechanism of ATP synthesis by F1F0-synthase. Biochim Biophys Acta. 2002 Feb 15; 1553(3): 188-211; Devenish R.J., Prescott M., Boyle G. M., Nagley P. The Oligomycin Axis of Mitochondrial ATP Synthase: OSCP and the Proton Channel. J Bioenerg Biomembr. 2000, 32(5):507-515; Salomon A.R., Voehringer D.W., Herzenberg L.A., Khosla C. Apoptolidin, a selective cytotoxic agent, is an inhibitor of F₀F₁-ATPase. Chemistry & Biology, 2001, 8, 71-80; Comelli M., Di P.F., Mavelli I. Apoptosis is induced by decline of mitochondrial ATP synthesis in erythroleukemia cells. Free Radicals Biol. Med. 2003; 34(9):1190-1199; Li Y.C., Fung K.P., Kwok T.T., Lee C.Y., Suen Y.K., Kong S.K. Mitochondria-targeting drug oligomycin blocked P-glycoprotein activity and triggered apoptosis in doxorubicin-resistant HepG2 cells. Chemotherapy. 2004, 50(2):55-62; M.G.Alekseeva, S.M.Elizarov, О.В.Bekker, I.K.Lubimova and V.N.Danilenko. F0F1ATP Synthase of Streptomycetes: Modulation of Activity and Oligomycin Resistance by Protein Ser/Thr Kinases. Biologicheskie Membrany, 2009, Vol.26, No.1, pp.41-49). Олигомицины влияют на важные клеточные процессы, такие как транслокацию протонов, связанную с АТФ-азой.

Важнейшими представителями этого химического класса являются олигомицин А (формула 1, R₁=CH₂, R₂=СН₃, R₃=H, R₄=OH), олигомицин В (формула 1 R₁=C=O, R₂=H, R₃=CH₃, R₄=OH), олигомицин C (формула 1, R₁=CH₂, R₂=H, R₃=CH₃, R₄=H), рутамицин А (формула 2, R=OH), рутамицин В (формула 2, R=H), цитоварицин (формула 3) и ряд других.

Олигомицин А - цитотоксичный макролидный антибиотик. По строению он представляет собой 26-членный α,β-ненасышенный лактон, сочлененный с бициклической спирокетальной структурой. Структура и абсолютная конфигурация олигомицина А были установлены при их сравнении с продуктами деградации рутамицина (G.Т.Carter. Structure Determination of Oligomycins A and С.J. Org. Chem. 1986, 51, 4264-4271). Хорошо изученный механизм действия макролидных антибиотиков группы олигомицинов основан на взаимодействии с F₀ комплексом F₀F₁АТФ-синтазы митохондрий эукариотов и цитоплазматического комплекса F₀F₁АТФ-синтазы некоторых актинобактерий (http://www.rpi.edu/dept/bcbp/molbiochem/MBWeb/mb1/part2/f1fo.htm). Вместе с тем предполагают, что у семейства данной группы антибиотиков могут быть другие биомишени [Wender PA, Jankowski OD, Longcore, K, Tabet EA, Seto H, Tomikawa T. Correlation of F₀F₁-ATPase inhibition and antiproliferative activity of apoptolidin analogues. Org Lett. 2006, 8(4):589-592]. Олигомицин специфичен в отношении С-субъединицы F₀ комплекса АТФ-синтазы и в микромолярных концентрациях эффективно блокирует транспорт протонов через субъединицу F₀ и синтез АТФ. Ферментный комплекс F0F1 АТФ-синтазы в настоящее время рассматривается как перспективная молекулярная мишень в противораковой и инфекционной терапии. [L.A Shchepina, О.Y Pletjushkina, А.V Avetisyan, L.E Bakeeva, Е.K Fetisova, D.S Izyumov, V.В Saprunova, M.Yu Vyssokikh, В.V Chernyak, and V.P Skulachev, Oligomycin, inhibitor of the F0 part of H+-ATP-synthase, suppresses the TNF-induced apoptosis, Oncogene (2002), 21, 8149-8157; Cole S.T., Alzari P.M. Microbiology. ТВ - a new target, a new drug. Science. 2005 Jan 14; 307(5707): 214-215].

Химическая модификация природных антибиотиков - важнейший способ получения новых препаратов, обладающих преимуществами перед исходными антибиотиками. Химическая модификация антибиотиков группы олигомицинов практически не проводилась. Описано частичное ацетилирование олигомицина А, которое привело к образованию 5,9,33-три-О-ацетил и 5,9,13,33-тетра-О-ацетил производных, чьи полные структуры установили на основе ¹Н и ¹³С ЯМР спектров. Эти производные не проявили ингибирующей активности при тестировании на спорах Aspergillus niger [László Szilágyi; János Samu; Ilona Harsányi, Structure Elucidation of Two Acetylated Derivatives of Oligomycin A, Spectroscopy Letters, 28, Issue 5 July 1995, 699-707]. Олигомицин А содержит несколько кето-групп, и была исследована их реакционная способность [Fausto Rfmires, James F. Marecek, Shu-I Tu, Thomas V. Kantor, and Hiroshi Okazaki, Effects of Borohydride-Treated Oligomycins on Processes of Energy Transduction in Mitochondria, Eur. J. Biochem. (1982), 121, 275-2279]. Авторами показано, что постепенное прибавление боргидрида натрия в этанольный раствор рутамицина и олигомицинов восстанавливает кето-группы по С-7 и С-11 положениям макролидного агликона до соответствующих гидроксильных групп без дальнейшего изменения лактонного цикла. Восстановленные соединения так же, как и исходные антибиотики, ингибируют АДФ-зависимое дыхание и выбрасывание протона, связанное с гидролизом АТФ, но не влияют на другие связанные с дыханием активности в интактных митохондриях печени крыс.

Ранее описаны способы химической модификации олигомицина А, селективно изменяющие 7-кето-группу и С-2, С-3-двойную связь. Взаимодействие олигомицина А с гидроксиламином привело к образованию 6-членного нитрона, аннелированного с исходным антибиотиком по положениям 3-7. Реакции с 1-аминопиридиниум йодидом дала пиразоло[1,5-а]пиридины, конъюгированные с олигомицином А по положениям С-2 и С-3, за которым последовало спонтанное окисление продукта присоединения по двойной связи С2-С3. Полученные производные менее токсичны, чем исходный. [L.N Lysenkova, K.F Turchin, V.N Danilenko, A.M Korolev and M.N Preobrazhenskaya, The first examples of chemical modification of oligomycin A, The Journal of Antibiotics (2010), 63, 17-22].

Раскрытие изобретения

По сравнению с полусинтетическими производными, описанными выше, в настоящем изобретении заменена 33-гидроксильная группа. Изобретение включает способ получения новых полусинтетических аналогов антибиотика олигомицина А, заключающийся в селективной этерификация гидроксильной группы в боковой цепи олигомицина А в положении С-33 хлорангидридом метансульфоной кислоты с образованием 33-O-метансульфонил-олигомицина А (формула 4), с последующим нуклеофильным замещением аниона метансульфоновой кислоты на азидогруппу (Схема 1). Реакцию азидирования 33-O-мезил-олигомицина А (формула 5) азидом натрия с получением 33-дезокси-33-азидо-олигомицина А проводили в апротонных растворителях - N,N-диметилформамиде и диметилсульфоксиде.

Схема 1

Кроме того, изобретение относится к фармацевтическим композициям, содержащим терапевтически эффективное количество по меньшей мере одного соединения, соответствующего формуле 4 или 5 в смеси по меньшей мере с одним приемлемым носителем.

Термин «Фармацевтически приемлемый» означает материал, используемый при получении фармацевтической композиции, обычно безопасный, нетоксичный и приемлемый для использования в фармацевтике и ветеринарии.

Примеры получения производных олигомицина А по настоящему изобретению

Пример 1

33-O-Мезил-олигомицин А (Формула 4).

Олигомицин в количестве 1,0 г помещали в круглодонную колбу с магнитной мешалкой и растворяли в 30 мл сухого пиридина. При сильном перемешивании в колбу добавляли 0,5 г диметиламинопиридина в виде порошка и метансульфохлорид 0,3 мл. Реакционную смесь перемешивали 1,5 часа при комнатной температуре и добавляли метансульфохлорид 0,2 мл, через час добавляли еще 0,1 мл метансульфохлорида. Контролировали реакцию методом тонкослойной хроматографии в системе гексан-ацетон (1:1), по окончании реакции реакционную смесь выливали на лед, подкисляли 1 N раствором соляной кислоты до pH 3 и экстрагировали этилацетатом (2×50 мл). Экстракт промывали водой до нейтрального значения pH, сушили и концентрировали в вакууме. Вещество очищали методом колоночной хроматографии на силикагеле в системе гексан-ацетон (4:1). Получали 0,6 мг (58%) производного олигомицина в виде бесцветного аморфного порошка, R_f 0,47 в системе гексан-ацетон, R_t 12,4 мин (подвижная фаза - вода - ацетонитрил. Элюция в градиентном режиме, при котором процентное содержание ацетонитрила изменялось от 80 до 95% за 10 минут и сохранялось 20 минут при 95% при скорости потока - 1 мл/мин). Найдено: m/z 891.4939 [М+Na]+. C₄₆H₇₆NaO₁₃S. Вычислено: М=891.4904. Найдено: m/z 907.4638 [М+К]+. С₄₆Н₇₆KO₁₃S. Вычислено: М=907.4643. Методами спектроскопии ЯМР ¹Н и ¹³С в вариантах 1D и 2D (кореляционные спектры ¹H-¹Н COSY и ¹Н-¹³С HETCOR)] изучено строение мезилата олигомицина А. Обнаружено значительное слабопольное смещение сигнала С₃₃Н (на ~0.9 м.д., отнесение на основании ¹Н-¹H COSY) и сигнала С₃₃ (на ~14 м.д., отнесение на основании ¹Н-¹³С HETCOR) относительно соответствующих сигналов в исходном олигомицине А. Указанный эффект, а также наличие в спектре ЯМР ¹Н мезилата синглета при δ 3.00 интенсивностью 3 п.е. согласуется с электронно-акцепторными свойствами заместителя O-S(O₂)СН₃ и подтверждает его присутствие при С₃₃ в мезилате олигомицина А.

Пример 2

33-Дезокси-33-азидо-олигомицин А (Формула 5)

33-O-Мезилолигомицин А в количестве 0,5 г помещали в круглодонную колбу, снабженную термометром и магнитной мешалкой, и растворяли в 10 мл сухого диметилформамида. Азид натрия 0,25 г присыпали в сухом виде, реакционную смесь нагревали до 60-65°C при перемешивании 2 часа. Контролировали реакцию методом тонкослойной хроматографии в системе гексан-ацетон, 1:1, и хлороформ-метанол, 10:0,5. Затем добавляли 0.125 г азида натрия. По окончании реакции реакционную смесь экстрагировали смесью толуола и этилацетата в соотношении 1:1, промывали водой, сушили сульфатом натрия. Азид олигомицина выделяли на силикагеле, используя хроматографическую систему хлороформ-метанол (30:0,5). Получали азид олигомицина в виде аморфного белого порошка с R_f 0,68 в системе хлороформ-метанол (10-0,5) с выходом 60%. R_t 23,0 мин (подвижная фаза - вода - ацетонитрил. Элюция в градиентном режиме, при котором процентное содержание ацетонитрила изменялось от 80 до 95% за 10 минут и сохранялось 20 минут при 95% при скорости потока - 1 мл/мин). ИК-спектр (порошок), v/см^-1: 2103 (азидо-группа). Найдено: m/z 838.5178 [М+Na]+. C₄₅H₇₃N₃O₁₀Na. Вычислено: М=838.5194.

Пример 3

Биологическая активность 33-O-мезилата и 33-дезокси-33-азидо олигомицина А

В таблице 1 представлены результаты сравнительного измерения активности олигомицина А и его производных 4 и 5 на линиях опухолевых клеток НСТ116 и K562, в клеточной тест-системе Streptomyces sp.(сверхчувствительной к олигомицинам) и протеолипосомах этого штамма. 33-Дезокси-33-азидо-олигомицин показал IC⁵⁰, сопоставимую с олигомицином А, проявив при этом в 1000 раз меньшую активность в бактериальной тест-системе Streptomyces sp., и почти пропорционально сниженную активность на протеолипосомах, содержащих F0F1АТФ синтазу. 33-о-мезилолигомицин менее активен по сравнению с олигомицином А в отношении линий раковых клеток НСТ116 и К562 в 6 и 45 раз соответственно, а также в 100 раз в клеточной тест-системе Streptomyces sp., как и предыдущее производное он проявлял активность в отношении F0F1АТФ синтазы в протеолипосомах.

Таким образом, получены новые производные антибиотика олигомицина А, обладающие высокой цитотоксической активностью в отношении линий опухолевых клеток. Поскольку новые производные не ингибируют АТФазу в протеолипосомах, следует считать, что биомишень для воздействия 4 и 5 не АТФаза. Такое утверждение правомерно, т.к. независимая от АТФазы мишень ранее показана для производных апоптолидина - соединения, близкого по структуре к олигомицину [Wender PA, Jankowski OD, Longcore K, Tabet EA, Seto H, Tomikawa T. Correlation of F₀F₁-ATPase inhibition and antiproliferative activity of apoptolidin analogues. Org Lett. 2006, 8(4):589-592]. Отсутствие воздействия синтезированных веществ 4 и 5 на F0F1 АТФсинтазу при сохранении высокой цитотоксичности и способности индуцировать апоптоз позволяет предполагать их меньшую токсичность для человека. Полученные нами соединения 4 и 5 можно использовать в качестве хит-соединений для создания на их основе новых противоопухолевых препаратов.