29.05.2019
219.017.6297

СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ БАКТЕРИЦИДНЫХ СВОЙСТВ ВЕЩЕСТВ

Вид РИД

Изобретение

Юридическая информация Свернуть Развернуть
Краткое описание РИД Свернуть Развернуть
Аннотация: Изобретение относится к биотехнологии и микробиологии. Предложен способ определения бактерицидных свойств веществ. Способ включает инкубирование тестовых микроорганизмов Escherichia coli в количестве от 5×10 до 5×10 жизнеспособных клеток на мл в жидкой питательной среде в течение 4-8 ч при 36-38°С в присутствии тестируемых веществ и в их отсутствии. Измеряют интенсивность упругого светорассеяния (Iod), редокс потенциал (Е) и электропроводность (Х). Общую степень активирования или ингибирования (+/-) жизнедеятельности тестовых микроорганизмов тестируемыми веществами определяют по формуле: ε=(ε+0,5ε+0,5ε)/2, где ε, ε и ε определяют по формулам ε=100×(ΔYt-ΔYc)/ΔYc, где ΔY=Ye-Yb - разности значений Iod, E или X, регистрируемых в начале (Yb) и в конце (Ye) инкубации тестовых образцов в присутствии тестируемых веществ (ΔYt) и в их отсутствии (ΔYc). Способ обеспечивает объективность оценки определения бактерицидных свойств веществ. 1 табл.
Реферат Свернуть Развернуть

Изобретение относится к области биоизмерительных технологий, а именно к способам оценки с помощью тестовых микроорганизмов бактерицидных свойств различных веществ.

Известен «Способ определения чувствительности микроорганизмов к антимикробным веществам» (патент RU №2505813, МПК G01N 33/48, дата приоритета 06.11.2012, опубликовано 27.01.2014), в котором антимикробную активность тестируемых веществ по отношению к тому или иному биоматериалу предлагается определять, исходя из количества колоний микроорганизмов, исходно содержащихся в означенном биоматериале и выросших на плотной накопительной питательной среде в присутствии тестируемого препарата, а также времени проявления видимого роста этих колоний. Недостатками этого способа являются его длительность (до 3-х суток), большая трудоемкость, большая материалоемкость по компонентам питательных сред, а также то, что антимикробная активность тестируемых веществ определяется визуально, и, следовательно, достаточно субъективно.

Известен «Способ оценки эффективности антимикробного воздействия антисептиков на бактерии, существующие в форме биопленки» (патент RU №2603100, МПК C12Q, дата приоритета 29.10.2015, опубликовано 20.11.2016), в котором эффективность действия антисептиков на бактерии, выделенные из клинического материала пациента и существующие в жидкой питательной среде (ЖПС) в форме биопленки, предлагается определять как отношение рабочей концентрации антисептика к его минимальной подавляющей концентрации. При этом регистрацию эффективности действия той или иной концентрации тестируемого антисептика на биопленку предлагается проводить с помощью фотометра - по изменению цвета и помутнению ЖПС с тестовыми микроорганизмами, инкубируемой при заданной температуре в течение заданного времени (от 5-и суток и более) в присутствии тестируемого антисептика, взятого в упомянутой концентрации. Основными недостатками этого способа, как и в предыдущих случаях, являются его большая длительность и трудоемкость, а также невысокая объективность, поскольку рассматриваемый способ позволяет оценивать влияние тестируемых веществ лишь на скорость роста тестовых микроорганизмов, но не на интенсивность их метаболизма.

Наиболее близким к предлагаемому техническому решению является «Способ определения бактерицидных свойств сыворотки крови» (патент RU №2489489, МПК C12Q 1/18, дата приоритета 26.12.2011, опубликовано 10.08.2013), в котором бактерицидные свойства проб сыворотки крови определяют по уменьшению интенсивности люминесценции инкубируемого в LB-бульоне в присутствии тестируемых проб тестового трансгенного штамма Bacillus subtilis ВКПМ В-10548, эффективно экспрессирующего luxAB-гены грамотрицательного морского микроорганизма Photobacterium leiognathi (в результате чего синтезируется фермент люцифераза, обеспечивающий активное свечение, интенсивность которого зависит от общего количества жизнеспособных тестовых микроорганизмов и активности их метаболизма). При этом анализ осуществляют следующим образом:

на первом (подготовительном) этапе выращивают штамм Bacillus subtilis ВКПМ В-10548 на LB-arape в присутствии канамицина в конечной концентрации 40 мкг/мл (что позволяет исключить рост не люминесцирующих штаммов) при 37°С в течение 24 часов. Полученную биомассу смывают стерильным LB-бульоном, после чего полученную суспензию стандартизуют до оптической плотности 1,2 отн. ед. при 540 нм (измеряемой в кюветах с длиной оптического пути 1 см);

на втором (основном) этапе смешивают суспензию бактериальных клеток и исследуемого образца сыворотки крови в соотношении 1:1 и инкубируют полученную смесь при 37°С в течение 30 минут. При этом до и после инкубации из тестовой смеси производят отбор аликвот по 250 мкл в кюветы для биолюминометра. И дополнительно вносят в них по 2 мкл деканаля в конечной концентрации 7×10-6 М (окисляемого в присутствии молекулярного кислорода ферментом люциферазой - что и обеспечивает активное свечение тестового штамма).

На завершающем этапе осуществляют регистрацию уровня свечения в пробах в видимой сине-зеленой области спектра (420-600 им). При этом в качестве измерительного прибора могут использоваться биохемилюминометр «Биоток-10М», а также прочие отечественные и зарубежные люминометры, работающие в обозначенной области спектра и обеспечивающие соответствующую чувствительность измерений.

К основным недостаткам данного технического решения можно отнести:

- узкую область применения (анализ бактерицидных свойств только лишь сыворотки крови человека и животных);

- необходимость использования специально выведенного, трансгенного, узкоспециализированного штамма тестовых микроорганизмов - что дополнительно ограничивает область применения данного технического решения, поскольку для тестирования про- и антибиотических свойств разных веществ могут требоваться разные тестовые организмы (либо лучше даже совокупность из нескольких разных видов и штаммов тестовых организмов);

- кроме того, штамм Bacillus subtilis ВКПМ В-10548, применяемый при реализации данного технического решения, не является широко доступным, и потому достаточно трудно сначала получить данный штамм, а затем длительное время поддерживать его чистоту, жизнеспособность и специфические свойства (выражающиеся, в частности, в активном синтезе фермента люциферазы);

- а также то, что рассматриваемый метод обладает не очень высокой объективностью, поскольку влияние тестируемых объектов (в качестве которых в данном случае выступают образцы сыворотки крови животных и человека) на тестовые организмы определяется всего лишь по одному косвенному параметру (интенсивности хемилюминесценции этих объектов) и с использованием тест-культуры с метаболизмом, не типичным по ряду параметров для большинства живых организмов.

Решается задача расширения области применения, а также повышения объективности и обеспечения доступности для использования более широким кругом пользователей способа определения бактерицидных свойств различных веществ.

Сущность заключается в том, что в предлагаемом способе (который включает такие операции как: подготовка тестовых образцов, инкубирование этих образцов, как в присутствии тестируемых веществ, так и в их отсутствие, сопровождающееся измерением свойств этих образцов в начале и в конце их инкубации, и последующее определение бактерицидных свойств тестируемых веществ на основании упомянутых измерений) тестовые образцы перед началом их инкубирования представляют собой Escherichia coli в количестве от 5×105 до 5×106 жизнеспособных клеток на мл, суспендированную в водном растворе, изначально содержащем 4-6 г/л глюкозы, 16-20 г/л белкового гидролизата и 1,8-2,2 г/л NaCI, и имеющем рН 6,8-7,4; инкубирование этих образцов в присутствии тестируемых веществ проводят в течение 4-8 часов при 36-38°С; свойства образцов определяют путем измерения значений интенсивности упругого светорассеяния (Iod), редокс потенциала (Е) и электропроводности (X); после чего общую степень активирования или ин-гибирования (+/-) жизнедеятельности тестовых микроорганизмов тестируемыми веществами определяют по формуле: εs=(εIod+0,5εЕ+0,5εХ)/2, где εIod, εЕ и εХ определяют по формулам εY=100×(ΔYt-ΔYc)/ΔYc, где ΔY=Ye-Yb - разности значений Iod, E или X, регистрируемых в начале (Yb) и в конце (Ye) инкубации тестовых образцов в присутствии тестируемых веществ (ΔYt) и в их отсутствие (ΔYc).

При этом выбор Escherichia coli в качестве тестовых микроорганизмов связан с тем, что E. coli является общепринятым санитарно-показательным микроорганизмом, официально рекомендуемым, в частности, для оценки качества воды, пищевой продукции, фармакологических и иных препаратов и т.п. (ГОСТ 18963-73. Вода питьевая. Методы санитарно-бактериологического анализа. + ГОСТ 30726-2001. Продукты пищевые. Методы выявления и определения количества бактерий вида Escherichia coli + Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Часть первая. / Под. ред. А.Н. Миронова. - М.: Гриф и К, 2012. - 944 с.); способна к активной жизнедеятельности как в аэробных, так и в анаэробных условиях, в широком диапазоне температур и на самых разнообразных субстратах (включая полное отсутствие органических веществ); является типичным представителем микрофлоры большинства природных водоемов и территорий, производственных и бытовых помещений, кишечника человека и большинства млекопитающих; легко доступна в получении, выделении (при необходимости) и культивировании; а также обладает весьма развитой ферментной системой, позволяющей E. coli осуществлять широкий спектр метаболических процессов, типичных для других живых организмов, и соответственно, типично для большинства живых организмов реагировать на присутствие широкого круга тестируемых объектов.

Выбор количества жизнеспособных тестовых микроорганизмов, которое должно присутствовать в тестовых образцах перед началом их инкубации в присутствии и в отсутствие тестируемых веществ (от 5×105 до 5×106 кл/мл), определяется тем, что при меньшем количестве таковых микроорганизмов увеличивается длительность инкубации, необходимая для достижения максимальной чувствительности заявляемого способа анализа; а при большем количестве тестовых микроорганизмов снижается интенсивность их роста и метаболизма, что приводит к уменьшению чувствительности анализа.

Выбор исходного состава жидкой питательной среды, входящей в состав тестируемых образцов (водный раствор с рН 6,8-7,4, содержащий 4-6 г/л глюкозы, 16-20 г/л белкового гидролизата и 1,8-2,2 г/л NaCl), связан с необходимостью обеспечения оптимальных условий для развития в этой среде тестовых микроорганизмов - что, как и в предыдущем случае, нужно для увеличения чувствительности и снижения продолжительности анализа.

Выбор режима инкубирования тестовых образцов (4-8 часов при 36-38°С) связан с тем, что при более длительном инкубировании снижается интенсивность роста и метаболизма тестовых микроорганизмов (что приводит к соответствующему снижению чувствительности анализа); при других температурах инкубирования интенсивность роста и метаболизма тестовых микроорганизмов также снижается (что приводит к уменьшению чувствительности анализа и необходимости увеличения его длительности); а при меньшем времени инкубирования тестовые микроорганизмы не успевают в достаточной степени среагировать на изменения в окружающей их среде, вызванные присутствием там тестируемых объектов (что приводит к снижению, как чувствительности, так и объективности анализа).

Увеличение (по сравнению с прототипом) объективности и спектра применимости заявляемого способа анализа обеспечивается тем, что в ходе него осуществляется точная, инструментальная, количественная оценка изменения как интенсивности роста (оцениваемой нефелометрическим методом по изменению у тестовых образцов значений Iod), так и метаболической активности (оцениваемой по изменению у тестовых образцов значений Е и X) общепринятых санитарно-показательных тестовых микроорганизмов (E. coli) вследствие воздействия на них широкого круга тестируемых объектов (которые могут включать в себя как различные отдельные химические частицы, вещества и материалы, так и их разнообразные смеси). В то время как в прототипе влияние тестируемых веществ на тестовые микрорганизмы определялось всего лишь по одному параметру тестового образца (а именно, интенсивности его хемилюминесценции); причем данным способом предлагалось оценивать бактерицидные свойства весьма узкого круга тестируемых объектов (а именно, сыворотки крови человека и животных), и к тому же, с помощью трансгенного, узкоспециализированного штамма тестовых микроорганизмов Bacillus subtilis ВКПМ В-10548 с метаболизмом, не типичным по ряду параметров для большинства живых организмов.

А доступность заявляемого способа анализа более широкому кругу пользователей обеспечивается, во-первых, возможностью применения для регистрации параметров тестовых образцов таких простых в эксплуатации, доступных и дешевых, переносных приборов, как например нефелометр «WGZ-2», иономер «Эксперт-001» и кондуктометр «Эксперт-002». Во-вторых, применением при анализе минимального числа дополнительных реагентов и ручных операций по засеву и оценке роста и метаболической активности тестовых микроорганизмов в присутствии тестируемых объектов (в то время как в прототипе предлагалось использовать такие специфические химические реагенты, как канамицин, деканаль и т.п., а также осуществлять множество дополнительных ручных операций по выращиванию тестовых микроорганизмов на LB-arape и последующему приготовлению суспензии бактериальных клеток в LB-бульоне). И, в-третьих, возможностью применения для анализа такого хорошо доступного и легко культивируемого вида тестовых микроорганизмов, как E. coli (в то время как в прототипе в качестве тестовых микроорганизмов предлагалось использовать штамм Bacillus subtilis ВКПМ В-10548, малодоступный и трудно культивируемый в условиях необходимости поддержания требуемой степени чистоты и жизнеспособности данной микробиологической культуры, нужных для осуществления Bacillus subtilis ВКПМ В-10548 таких специфических свойств, как, в частности, активный синтез фермента люциферазы).

Реализация предлагаемого способа определения бактерицидных свойств веществ осуществляется следующим образом:

Этап 1. В две или несколько стерильных емкостей заливается необходимое количество жидкой питательной среды (ЖПС), представляющей собой водный раствор с рН 6,8-7,4, содержащий 4-6 г/л глюкозы, 16-20 г/л белкового гидролизата и 1,8-2,2 г/л NaCl. Далее, все емкости с ЖПС закрываются и стерилизуются. После чего все емкости со стерильной ЖПС (СЖПС) хранятся в закрытом виде, в отсутствие света при 2-4°С.

Этап 2. Отбирается определенное количество тестируемого объекта (вещества или смеси различных веществ). После чего отобранные пробы доставляются в лабораторию и хранятся там до начала анализа в темном месте, в закрытом виде, при 2-4°С.

Этап 3. Приготавливается ЖПС с тестовыми микроорганизмами (МЖПС). Для чего в одну или несколько емкостей с СЖПС стерильно вносится 1 об. % закваски, содержащей жизнеспособные клетки Escherichia coli, суспендированные в ЖПС; после чего все эти емкости закрываются и инкубируются при 36-38°С в течение 12 ч. Далее, в каждой из них нефелометриче-ским методом измеряется интенсивность упругого светорассеяния (Iod) МЖПС.И по предварительно построенному калибровочному графику (представляющему собой зависимость Iod МЖПС от концентрации содержащихся в ней клеток E. coli) удостоверяется, что полученное значение Iod соответствует концентрации E. coli в МЖПС от 5×105 до 5×106 клеток на мл. При этом, если Iod, измеренная в какой-либо из емкостей, соответствует концентрации E. coli в МЖПС меньше 5×105 кл/мл, то эта емкость инкубируется при 36-38°С в течение еще 3 ч; после чего для нее проводится повторное определение Iod. А если Iod, измеренная в какой-либо из емкостей, соответствует концентрации E. coli в МЖПС больше 5×106 кл/мл, то МЖПС в этой емкости разбавляется необходимым количеством СЖПС.

Этап 4. Если нас интересует концентрационная зависимость про- или антимикробного действия тестируемого объекта, содержащегося в пробах, отобранных на 2-м этапе анализа, либо эти пробы имеют слишком высокую исходную токсичность (так что ожидается, что в неразведенном виде они будут слишком сильно ингибировать развитие тестовых микроорганизмов), то делается необходимое количество разведений исходных проб. После чего каждая проба или каждое ее разведение делится на 3-5 равных частей, каждая из которых помещается в отдельную емкость (например, пробирку), куда также добавляется заданное количество смеси, содержащей СЖПС и МЖПС в соотношении от 9/1 до 3/2 по объему.

Этап 5. Все емкости с тестируемыми объектами, плюс некоторое количество контрольных емкостей, содержащих МЖПС без добавок (а также, в случае необходимости, МЖПС с заданным количеством вещества или смеси веществ, про- или антимикробная активность которых известны заранее) закрываются, перемешиваются и помещаются в термостат, где инкубируются в течение 4-8 часов при температуре 36-38°С.При этом непосредственно перед началом и после окончания инкубации регистрируются значения таких параметров МЖПС (изменяющихся вследствие роста и размножения тестовых микроорганизмов, а также преобразования ими в ходе метаболической активности одних веществ, входящих в состав МЖПС, в другие) как интенсивность упругого светорассеяния в видимой или ближней инфракрасной областях спектра (Iod), редокс потенциал (Е) и электропроводность (X).

Этап 6. После этого общая степень активирования или ингибирования (+/-) жизнедеятельности тестовых микроорганизмов тестируемыми объектами рассчитывается по формуле

εs=(εIod+0,5εЕ+0,5εХ)/2,

где εY=100×(ΔYt-ΔYc)/ΔYc - частные степени активирования или ингибирования жизнедеятельности тестовых микроорганизмов тестируемыми объектами, рассчитываемые по изменениям Iod, Е или X;

a ΔY=Ye-Yb - разности значений Iod, Е или X, регистрируемых в начале (Yb) и в конце (Ye) инкубации тестовых образцов в присутствии тестируемых объектов (ΔYt) и в их отсутствие (ΔYc).

Заявляемый способ может быть реализован с применением таких основных измерительных приборов, как нефелометр («WGZ-2» или иной, позволяющий с достаточной степенью чувствительности измерять для жидких, водных образцов интенсивность упруго рассеиваемого света в видимой области спектра), иономер («Эксперт-001» или иной, позволяющий с достаточной степенью чувствительности измерять редокс потенциал жидких, водных образцов) и кондуктометр («Эксперт-002» или иной, позволяющий с достаточной степенью чувствительности измерять изменение электропроводности жидких, водных образцов).

Более детально настоящее изобретение описывается следующим конкретным примером.

Для анализа было взято три образца, содержащих х.ч. н-гексан, толуол и уайт-спирит (представляющий собой смесь различных жидких алифатических и ароматических углеводородов). Каждый из этих образцов помещался в 6 пробирок (в 3-й в концентрации 2×10-3 об. %, плюс в 3-й в концентрации 2×10-5 об.%), в которые затем дополнительно было налито по 7 мл СЖПС (в качестве которой использовался стерилизуемый автоклавированием в течение 20 мин при 121°С водный раствор с рН 7,2±0,2, содержащий 5 г/л глюкозы, 18 г/л панкреатического гидролизата рыбной муки и 2 г/л NaCl) и 3 мл МЖПС (той же СЖПС, но содержащей дополнительно в 1 мл около 10 жизнеспособных клеток Escherichia coli АТСС 25922, что удостоверялось по бактериальному стандарту мутности).

Затем все эти пробирки (включая 3-й контрольные, также содержавшие смесь СЖПС и МЖПС в соотношении 7 к 3, но без добавления какого-либо из анализируемых образцов) закрывались пробками, перемешивались, помещались в жидкостной термостат «LOIP LT-117b» и инкубировались в нем при температуре 37±0,1°С (оптимальной для роста и развития тестовых микроорганизмов) в течение 5-и часов. При этом через 10 минут после начала инкубации и за 10 минут до ее окончания последовательно в каждой из пробирок регистрировались интенсивность упругого светорассеяния (Iod), редокс потенциал (Е, мВ) и удельная, линейная, низкочастотная электропроводность (X, мкСм/см). Причем значения Iod регистрировались с помощью нефелометра «WGZ-2». Значения Е регистрировались с помощью иономера «Эксперт-001» с комбинированным электродом «ЭРП-105». А значения X регистрировались с помощью кондуктометра «Эксперт-002», работающего на частоте 1,6 кГц, с погружным датчиком «УЭП-П-С».

Далее, изменения каждого из измеренных параметров инкубируемой среды рассчитывались по формуле: ΔY=Ye-Yb (где Yb и Ye - значения Iod, Е или X, зарегистрированные в каждой из контрольных и тестовых пробирок в начале и в конце их инкубирования). Затем все полученные значения AY/ усреднялись (по пробиркам, содержащим одни и те же концентрации одних и тех же образцов), и для каждого из усредненных значений рассчитывался 95% доверительный интервал. После чего общая степень активирования или ин-гибирования (+/-) жизнедеятельности тестовых микроорганизмов тестируемыми образцами рассчитывалась по формуле

εs=(εIod+0,5εЕ+0,5εХ)/2,

где εY=100×(ΔYt-ΔYc)/ΔYc - частные степени активирования или ингибирования жизнедеятельности тестовых микроорганизмов тестируемыми объектами, рассчитываемые по изменениям Iod, Е или X;

a ΔYt и ΔYc - разности значений Iod, Е или X, регистрируемых в начале (Yb) и в конце (Ye) инкубации тестовых образцов в присутствии тестируемых объектов (ΔYt) и в их отсутствие (ΔYc).

Результаты этих расчетов представлены в таблице 1.

Примечания. Здесь индексами «рЗ» и «р5» обозначены концентрации тестируемых объектов, равные 2×10-3 и 2×10-5 об.% соответственно. УС -уайт-спирит, Тл - толуол, нГ - н-гексан.

Из представленных данных можно сделать следующие выводы. В присутствии любого из тестируемых объектов в концентрации 2×10-5 об.% наблюдалась активация жизнедеятельности тестовых микроорганизмов - наибольшая для гексана, в меньшей степени для толуола и в еще меньшей степени для уайт-спирита. В то же время, в концентрации 2×10-3 об.% толуол и уайт-спирит ингибировали жизнедеятельность E.coli. Причем толуол осуществлял такое ингибирование в существенно большей степени, чем уайт-спирит.А в присутствии последнего в гораздо большей степени происходило ингибирование активности метаболизма E.coli (выражаемой значениями Е и X) нежели интенсивности роста и размножения таковых микроорганизмов (выражаемой значениями Iod).

Таким образом, заявляемый способ может обеспечить расширение области применения определения бактерицидных свойств веществ, а также повышение объективности такого определения и доступности его для использования более широким кругом пользователей.

Источник поступления информации: Роспатент

Показаны записи 1-10 из 105.
10.01.2015
№216.013.17c3

Способ определения коэффициента квадратичной фазовой модуляции сверхкороткого оптического импульса

Способ относится к лазерной технике и может быть использован для создания устройства прямого самореферентного определения коэффициента квадратичной фазовой модуляции сверхкороткого оптического импульса. Способ определения коэффициента квадратичной фазовой модуляции сверхкороткого оптического...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002537511
Дата охранного документа: 10.01.2015
10.01.2015
№216.013.1d3d

Способ деперсонализации персональных данных

Изобретение относится к области защиты информации, хранимой в информационных системах персональных данных (ИСПДн), от несанкционированного доступа (НСД) и может быть использовано на стадиях разработки и оптимизации ИСПДн в защищенном исполнении. Техническим результатом является повышение уровня...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002538913
Дата охранного документа: 10.01.2015
10.01.2015
№216.013.1e16

Волоконно-оптическое устройство для измерения напряженности электрического поля

Изобретение относится к измерительным устройствам на основе волоконно-оптических фазовых поляриметрических датчиков. Оптимизация структуры датчика, обуславливающая возникновение разноименной модуляции показателя преломления при подаче на двухканальный модулятор разности фаз напряжения одной...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002539130
Дата охранного документа: 10.01.2015
10.02.2015
№216.013.2349

Способ получения резистивного элемента памяти

Изобретение относится к нанотехнологии и может применяться при изготовлении планарных двухэлектродных резистивных элементов запоминающих устройств. Способ получения резистивного элемента памяти включает в себя создание проводящих электродов на непроводящей подложке, напыление в зазор между...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002540486
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.234c

Способ оценки степени обогатимости минерального сырья оптическим методом и устройство для его реализации

Группа изобретений относится к контрольно-измерительной технике и может быть использовано для предварительной оценки обогатимости руд твердых полезных ископаемых и определения параметров их селекции. Согласно способу определяют полезность и зоны различения каждого минерального объекта из партии...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002540489
Дата охранного документа: 10.02.2015
20.02.2015
№216.013.2bab

Способ центрировки линзы в оправе и оправа для его осуществления

Способ включает установку линзы на плоский буртик промежуточной части оправы, размещаемой на буртике цилиндрического отверстия основной оправы с возможностью наклона. Вращают основную оправу вокруг ее базовой оси, измеряют биение центра кривизны первой рабочей поверхности линзы относительно оси...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002542636
Дата охранного документа: 20.02.2015
20.03.2015
№216.013.320d

Способ центрировки линзы в оправе и оправа для его осуществления

Способ включает установку линзы сферической рабочей поверхностью на опорный буртик цилиндрического отверстия промежуточной цилиндрической части, размещаемой на опорном буртике цилиндрического отверстия основной оправы. Измеряют биение центра кривизны первой рабочей поверхности относительно оси...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002544288
Дата охранного документа: 20.03.2015
10.04.2015
№216.013.3d3b

Способ измерения параметров и характеристик источников излучения

Изобретение относится к измерительной технике и касается способа измерения параметров и характеристик источников излучения. При реализации способа приемник оптического излучения размещают с возможностью перемещения по трем координатам в облучаемой зоне исследуемого источника излучения....
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002547163
Дата охранного документа: 10.04.2015
20.04.2015
№216.013.4457

Измельчительный механизм волчка

Изобретение относится к пищевой промышленности, а именно к волчкам и мясорубкам. Измельчительный механизм волчка содержит корпус для шнека, шнек с хвостовиком, режущий инструмент, палец для крепления ножей и решеток. При этом в корпусе для шнека и в шнеке выполнены охлаждающие каналы. Каналы...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002548993
Дата охранного документа: 20.04.2015
20.04.2015
№216.013.4530

Способ обнаружения объекта на малых дистанциях и устройство для его осуществления

Изобретение относится к области обнаружения в пространстве объектов, к способам и устройствам лазерной локации и может быть использовано в системах обнаружения и распознавания целей, в системах предупреждения столкновения транспортных средств, в навигационных устройствах и в системах охранной...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002549210
Дата охранного документа: 20.04.2015
Показаны записи 1-10 из 13.
10.04.2015
№216.013.37a1

Сетчатое биоактивное раневое покрытие

Изобретение относится к медицине, а именно к хирургии. Описано сетчатое биоактивное раневое покрытие, содержащее в своей основе дезинтегрированную бактериальную целлюлозу, включающую антимикробный и антиоксидантный компоненты: модифицированный серебром монтмориллонит и фуллеренол, направленные...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002545729
Дата охранного документа: 10.04.2015
10.04.2015
№216.013.37a7

Биоактивное гидрогелевое раневое покрытие

Изобретение относится к медицине, а именно к хирургии. Описано биоактивное раневое покрытие на основе гидрогелевого нанокомпозита, которое содержит антимикробный и антиоксидантный компоненты: модифицированный серебром монтмориллонит и фуллеренол, направленные на оптимизацию течения раневого...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002545735
Дата охранного документа: 10.04.2015
26.08.2017
№217.015.d47d

Способ получения нанокомпозитного сорбента для засушливых почв

Изобретение относится к способу получения нанокомпозитного сорбента для засушливых почв. Сорбент получают путём инициированной радикальной полимеризации акриловых мономеров в присутствии бентонита в водной среде при перемешивании. Полимеризации подвергают смесь мономеров, состоящую из...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002622430
Дата охранного документа: 15.06.2017
26.08.2017
№217.015.dac1

Состав нанокомпозитного сорбента для засушливых почв

Изобретение относится к сорбентам для засушливых почв. Сорбент содержит полимерную матрицу на основе акриламида, N,N'-диметилакриламида и акриловой кислоты и наполнитель – бентонит. Соотношение полимерная матрица:бентонит составляет от 1:0,05 до 1:1 массовых долей. В качестве сшивающего агента...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002623769
Дата охранного документа: 29.06.2017
10.05.2018
№218.016.44ea

Состав биодеградируемой полимерной композиции для обработки пищевых продуктов

Композиция включает в г/100 г: пищевой желатин 1,8-4,5, крахмал 0,2-0,5, глицерин 0,6-1,5, бентонит 0,06-0,15, эфирное масло имбиря 0,1-0,25 и воду - остальное. Покрытие композицией пищевых продуктов, таких как фрукты и овощи, обеспечивает продление срока их годности и сохранение товарного...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002649981
Дата охранного документа: 06.04.2018
27.12.2018
№218.016.ac13

Способ определения устойчивости материалов к биодеградации

Изобретение относится к материаловедению, а именно к определению устойчивости материалов к биодеградации. Для этого подготавливают образцы с тестируемыми материалами, стерильную жидкую питательную среду (СЖПС) и питательную среду с тестовыми микроорганизмами (МЖПС). СЖПС представляет собой...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002676094
Дата охранного документа: 26.12.2018
09.05.2019
№219.017.4a0e

Способ определения устойчивости органических полимеров к деградации, индуцируемой различными факторами

Изобретение относится к технике исследования механических свойств материалов. Способ включает в себя подготовку стерильной плотной питательной среды (СППС, представляющей собой водный раствор с рН 7,2±0,3, содержащий 13-19 г/л агар-агара + 8-12 г/л сахарозы + 1,3-1,9 г/л NHNO + 0,4-0,6 г/л KHPO...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002687174
Дата охранного документа: 07.05.2019
20.05.2019
№219.017.5cee

Способ определения антибиотических свойств материалов

Изобретение относится к биоизмерительным технологиям. Предложен способ определения антибиотических свойств материалов. Способ включает инкубирование тестового штамма Rhodotorula sp. VКM Y-2993D в количестве от 5×10 до 5×10 жизнеспособных клеток на мл в жидкой питательной среде рН 6,6-7,4 в...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002688119
Дата охранного документа: 17.05.2019
20.05.2019
№219.017.5d42

Способ оценки про- и антимикробных свойств проб

Изобретение относится к биоизмерительным технологиям. Предложен способ оценки про- и антимикробных свойств проб. Способ включает инкубирование тестовых микроорганизмов Lactobacillus sp. в количестве от 5×10 до 5×10 жизнеспособных клеток на мл в жидкой питательной среде рН 6,6-7,4 в течение 4-8...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002688117
Дата охранного документа: 17.05.2019
24.05.2019
№219.017.5f03

Способ определения токсичности проб

Изобретение относится к биотехнологии и микробиологии. Предложен способ определения токсичности проб, содержащих нефтепродукты. Способ включает инкубирование тестовых микроорганизмов Pseudomonas yamanorum VKM B-3033D в количестве от 5×10 до 5×10 жизнеспособных клеток на мл в жидкой питательной...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002688745
Дата охранного документа: 22.05.2019

Похожие РИД в системе