СОСТАВ ЖИДКОСТИ ДЛЯ ИЗУЧЕНИЯ И ДЕМОНСТРАЦИИ АРТЕРИАЛЬНОГО РУСЛА ЖИВОТНЫХ

Изобретение относится к ветеринарии и биологии, конкретно к морфологии, позволяет получать анатомические препараты артерий и ангиографические снимки.

Желатин и акриловые краски довольно широко используются в качестве массы для заполнения артерий и вен, при этом препараты можно использовать только для макроскопических целей. Контрастные вещества также широко применяют в анатомии для наполнения сосудов и получения рентгеновского изображения, однако предложенные рядом авторов массы отличаются трудоемкостью приготовления и объекты с использованием таких масс не достигают демонстрационных качеств макропрепаратов (масса Гауха) [1-6].

Состав жидкости в отличие от известных позволяет четко видеть инъецируемые сосуды на контрастируемых рентгеновских снимках, которые длительно сохраняются для макроскопического изучения и демонстрации артерий и вен. Сосуды, пропитанные желатином и акрилом, приобретают эластичность, а при их повреждении во время препарирования инъецируемая масса не диффундирует, и при фиксации препарата данный состав сохраняется в просвете сосуда.

Предложенный состав отличается спецификой и легкостью в исполнении инъекции артериального русла.

Для инъецируемой массы готовят однородную смесь из компонентов: желатин перемешивают до полного растворения в воде (t 80°С), добавляют акриловые краски, зубной порошок и рентгеноконтрастное вещество (сернокислый барий). При повреждении сосудов во время препарирования масса не диффундирует и при фиксации материала сохраняется в сосудах. Ниже приведен состав, применяемый нами для инъекции артерий собак массой до 20 кг, включающий:

1) желатин пищевой 100 г;

2) зубной порошок 100 г;

3) акриловая краска для окрашивания массы до желаемого оттенка;

4) сернокислый барий 150 г;

5) вода дистиллированная 500 мл (t 80°С).

Раствор должен иметь консистенцию густых сливок, его постоянно перемешивают. Вводят через доступную артерию. Мы проводили инъекцию артерий тазовой полости у различных животных: норки, овцы, собаки, кошки (рис. 1, 2, 3).

После инъекции артерий или вен труп следует поместить в прохладное, а затем холодное место на 1 сутки для затвердевания массы.

Полученные таким способом анатомические препараты можно использовать для научных и учебных целей.

Предлагаемый метод получения анатомических препаратов характеризуется простотой исполнения, дешевизной, доступностью и безопасностью применяемых составляющих, сохранением наглядности при изучении сердечно-сосудистой системы животного.

Литература

1. Богуславская Т.Б. Изготовление топографо-анатомических препаратов и методика некоторых анатомических исследований. - Москва, 1958.

2. Ковешникова А К., Клебанова Е.А. Способы изготовления анатомических препаратов. - Москва, Учпедгиз. - 1954.

3. Кузнецов Л.Е., Хохлов В.В., Фадеев СП., Шигеев В.Б. Бальзамирование и реставрация трупов: Руководство. - Москва. - 1999.

4. Пикалюк B.C., Мороз Г.А., Кутя С.А. Методическое пособие по изготовлению анатомических препаратов. - Симферополь, 2004.

5. Привес М.Г. Методы консервирования анатомических препаратов. - Медгиз, Ленинградское отделение, 1956. - 128 с.

6. Шульц Б.Д. Методические указания по изготовлению анатомических препаратов сельскохозяйственных животных. Омск, 1964.