×
10.05.2013
216.012.3dd5

Результат интеллектуальной деятельности: СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ ГЕМОПОЭТИЧЕСКИХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК МЕТОДОМ ИММУНОМАГНИТНОЙ СЕПАРАЦИИ

Вид РИД

Изобретение

Аннотация: Изобретение относится к области клеточной биологии, в частности к способу выделения гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) из пуповинной крови лабораторных животных. Способ заключается в выделении ГСК за счет удаления из суспензии, содержащей различные гемопоэтические клетки, элементов, не являющихся ГСК. В качестве буфера для иммуномагнитной сепарации (БИМС) используют коктейль для сепарации (КС) следующего состава: PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков на 100 мл КС: пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/м, инкубирование клетки с частицами для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM производят при - 20°С в течение 3 мин. Способ позволяет получить существенное увеличение жизнеспособности выделенных ГСК. Изобретение может быть использовано в клеточной терапии различных заболеваний. 3 пр.
Основные результаты: Способ выделения гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) методом иммуномагнитной сепарации, заключающийся в выделении ГСК за счет удаления из суспензии, содержащей различные гемопоэтические клетки, элементов, не являющихся ГСК, отличающийся тем, что в качестве буфера для иммуномагнитной сепарации (БИМС) используют коктейль для сепарации (КС) следующего состава: PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков на 100 мл КС: пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/м, инкубирование клетки с частицами для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM производят при - 20°С в течение 3 мин.

Изобретение относится к области клеточной биологии, в частности к способу выделения гемопоэтических стволовых клеток из пуповинной крови лабораторных животных (мыши), что может быть использовано в клеточной терапии различных заболеваний.

На сегодняшний день существуют различные способы выделения гемопоэтических стволовых клеток (ГСК).

Наиболее близким способом выделения ГСК мыши к заявляемому способу можно считать способ выделения ГСК мыши методом непрямой иммуномагнитной сепарации с использованием набора антител: EasySep Mouse hematopoietic Progenitor Cell Enrichment Cocktail, а также EasySep Biotin Selection Cocktail (Catalog 2010 StemCell Technologies, Канада. Р.244). Данный метод предполагает выделение ГСК за счет удаления из суспензии, содержащей различные гемопоэтические клетки, элементов, не являющихся ГСК. Недостатком прототипа является то, что согласно протоколу производителя жизнеспособность выделенных клеток (ГСК) составляет 80-85%.

Изменение методики выделения ГСК методом непрямой иммуномагнитной сепарации заключается в замене предлагаемого производителем буфера для иммуномагнитной сепарации (БИМС) на разработанный заявителем коктейль для сепарации (КС). Состав рекомендованного производителем БИМС: PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА. Состав разработанного заявителем КС: PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (на 100 мл КС: пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл). Также изменено время и условия инкубирования клеток с частицами для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM. Согласно методике производителя клетки необходимо инкубировать 30 мин при 6-12°С. Заявитель рекомендует инкубирование клетки с частицами для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM при -20°C в течение 3 мин. Изменение методики: замена БИМС на КС, а также изменение времени (уменьшение на порядок) и условий инкубирования приводит к существенному увеличению жизнеспособности выделенных ГСК. Содержание ГСК определялось с использованием антител к специфическим для ГСК антигенам на поверхности клеток. Положительные маркеры к ГСК мыши: CD 38; Sca 1+; CD 117; CD 90 (низкий уровень). Отрицательные маркеры к ГСК мыши: Lin-; CD34. Жизнеспособность определялась с использованием стандартного красителя трипановый синий.

Технический результат заключается в существенном увеличении жизнеспособности выделенных ГСК.

Способ выполняют следующим образом:

После получения пуповинной крови лабораторных мышей объем выделенной крови доводится до 1 мл с помощью буфера для окрашивания. При этом состав буфера для окрашивания следующий: фосфатный буфер без ионов Са2+ и Mg2+ с добавлением 3% инактивированной фетальной бычьей сыворотки (FBS) и с добавлением 0,1% азидом натрия. Производится подсчет клеток в камере Горяева. К полученной таким образом суспензии клеток добавляются мышиные антитела к CD16C/CD32 в соотношении 0,25 мкг/млн кл. Инкубируется 15 мин на льду. После чего добавляется коктейль антител в концентрации 5 мкл/млн кл. Повторно инкубируется 15 мин на льду. Ресуспендируется полученная суспензия клеток в КС (7 мл). Центрифугироние при 300 g в течение 7 минут. Полученный осадок клеток ресуспендируется в КС до объема 1 мл. Добавляются частицы для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM 5 мкл/млн кл. Охлаждение 3 мин при -20°С.

Меченые клетки переносятся в 5 мл пробирку Falcon. Инкубирование 12 мин на иммуномагнитном сепараторе (ИМС). Супернатант удаляется в новую пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК). Добавляется 1 мл КС и ресуспендируется 10-15 раз. Повторное инкубирование 12 мин на ИМС. Удаление супернатанта в прежнюю пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК). Пробирку с суспензией клеток после негативной селекции инкубируют 12 минут на ИМС. Удалить супернатант - это и будет конечная фракция, обогащенная ГСК методом ИМС. Используя набор антител, определяют содержание гемопоэтических стволовых клеток в полученной суспензии. Положительные маркеры к ГСК мыши: CD 38; Sca 1+; CD 117; CD 90 (низкий уровень). Отрицательные маркеры к ГСК мыши: Lin-; CD34. Для определения количества живых клеток аликвоту суспензии (40 мкл) смешивают с равным количеством 0,4% раствора трипановый синий в PBS (без Ca2+ и Mg2+). Исходная концентрация клеток рассчитывается по формуле:

С (cell/ml)=5*105* (количество клеток в одном большом квадрате).

Живые клетки непроницаемы для трипанового синего, а мертвые проницаемы и окрашиваются.

Пример №1

А: (Действие согласно протоколу производителя).

1. Забой лабораторных животных осуществляется методом шейной дистракции.

1'. Стерилизация лабораторного животного проводится путем помещения мыши на 5 минут в 90% раствор этилового спирта.

2. В стерильных условиях осуществляется получение пуповинной крови.

3. Доводится объем крови до 1 мл, используя буфер для окрашивания, рекомендованный производителем (PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

4. Подсчет клеток в камере Горяева: В маленькую пробирку (объемом 2-3 мл), содержащую 400 мкл 3% уксусной кислоты, добавляется 20 мкл (разведение 1:20) суспензии клеток костного мозга и перемешивается.

5. Получена суспензию клеток, содержащая 30 млн кл/мл (в буфере для окрашивания: PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

6. Добавить мышиные антитела к CD16C/CD32 в соотношении 0,25 мкг/млн кл. (т.о. всего 7,5 мкг CD16C/CD32).

7. Инкубировать 15 мин на льду.

8. Добавить коктейль антител в концентрации 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 150 мкл коктейля антител).

9. Инкубировать 15 мин на льду.

10. Добавить 10-кратный избыточный объем однократный буфер для иммуномагнитной сепарации БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА) в соотношении 1:10.

11. Центрифугировать при 300 g в течение 7 минут.

12. Полученный осадок клеток ресуспендировать в БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА) до объема 1 мл.

13. Добавить частицы для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 150 мкл частиц для сепарации).

14. Охлаждать 30 мин при 6-12°С.

15. Перенести меченые клетки в 5 мл пробирку Falcon.

16. Инкубировать 8 мин на ИМС.

17. Удалить супернатант в новую пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК).

18. Добавить 1 мл БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА).

19. Инкубировать 8 мин на ИМС.

20. Удалить супернатант в прежнюю пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК).

21. Пробирку с суспензией клеток после негативной селекции инкубировать 8 минут.

22. Удалить супернатант - это и будет конечная фракция обогащенная ГСК методом ИМС.

ГСК мыши: на проточном цитометре уточняется содержание ГСК в полученной суспензии.

Отрицательные маркеры: Lin-; CD34.

Положительные маркеры: CD 38; Sca 1+; CD 117; CD 90 (низкий уровень).

Содержание ГСК 350 тыс. (1,2% от исходного содержания всех клеток крови). Жизнеспособность ГСК с использованием красителя трипанового синего составляет 78%.

Б. Действие согласно заявляемому способу.

Используя следующий состав коктейля для сепарации (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл) вместо БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА):

1. Забой лабораторных животных осуществляется методом шейной дистракции.

2. Стерилизация лабораторного животного проводится путем помещения мыши на 5 минут в 90% раствор этилового спирта.

3. В стерильных условиях осуществляется получение пуповинной крови.

4. Доводится объем крови до 1 мл, используя буфер для окрашивания, рекомендованный производителем (PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

5. Подсчет клеток в камере Горяева: В маленькую пробирку (объемом 2-3 мл), содержащую 400 мкл 3% уксусной кислоты, добавляется 20 мкл (разведение 1:20) суспензии клеток костного мозга и перемешивается.

6. Получена суспензию клеток, содержащая 30 млн кл./мл (В буфере для окрашивания: PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

7. Добавить мышиные антитела к CD16C/CD32 в соотношении 0,25 мкг/млн кл. (т.о. всего 7,5 мкг CD16C/CD32).

8. Инкубировать 15 мин на льду.

9. Добавить коктейль антител в концентрации 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 150 мкл коктейля антител).

10. Инкубировать 15 мин на льду.

11. Добавить коктейль для сепарации: (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл).

12. Центрифугировать при 300 g в течение 7 минут.

13. Полученный осадок клеток ресуспендировать в КС (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл) до объема 1 мл.

14. Добавить частицы для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 150 мкл частиц для сепарации).

15. Охлаждать 3 мин при -20°С

16. Перенести меченые клетки в 5 мл пробирку Falcon.

17. Инкубировать 12 мин на ИМС.

18. Удалить супернатант в новую пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК).

19. Добавить 1 мл КС (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл).

20. Инкубировать 12 мин на ИМС.

21. Удалить супернатант в прежнюю пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК).

22. Пробирку с суспензией клеток после негативной селекции инкубировать 12 минут.

23. Удалить супернатант - это и будет конечная фракция обогащенная ГСК методом ИМС.

ГСК мыши: на проточном цитометре уточняется содержание ГСК в полученной суспензии.

Отрицательные маркеры: Lin-; CD34.

Положительные маркеры: CD 38; Sca 1+; CD 117; CD 90 (низкий уровень).

Содержание ГСК 500 тыс. (1,7% от исходного содержания всех клеток крови). Жизнеспособность ГСК с использованием красителя трипанового синего составляет 95%.

Пример №2

А: (Действие согласно протоколу производителя).

1. Забой лабораторных животных осуществляется методом шейной дистракции.

2. Стерилизация лабораторного животного проводится путем помещения мыши на 5 минут в 90% раствор этилового спирта.

3. В стерильных условиях осуществляется получение пуповинной крови.

4. Доводится объем крови до 1 мл, используя буфер для окрашивания, рекомендованный производителем (PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

5. Подсчет клеток в камере Горяева: В маленькую пробирку (объемом 2-3 мл), содержащую 400 мкл 3% уксусной кислоты, добавляется 20 мкл (разведение 1:20) суспензии клеток костного мозга и перемешивается.

6. Получена суспензию клеток, содержащая 15 млн кл./мл (в буфере для окрашивания: PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

7. Добавить мышиные антитела к CD16C/CD32 в соотношении 0,25 мкг/млн кл. (т.о. всего 3,75 мкг CD16C/CD32).

8. Инкубировать 15 мин на льду.

9. Добавить коктейль антител в концентрации 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 75 мкл коктейля антител).

10. Инкубировать 15 мин на льду.

11. Добавить 10-кратный избыточный объем однократный буфер для иммуномагнитной сепарации БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА) в соотношении 1:10.

12. Центрифугировать при 300 g в течение 7 минут.

13. Полученный осадок клеток ресуспендировать в БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА) до объема 1 мл.

14. Добавить частицы для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 75 мкл частиц для сепарации).

15. Охлаждать 30 мин при 6-12°С.

16. Перенести меченые клетки в 5 мл пробирку Falcon.

17. Инкубировать 8 мин на ИМС.

18. Удалить супернатант в новую пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, содержит обогащенную фракцию ГСК).

19. Добавить 1 мл БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА).

20. Инкубировать 8 мин на ИМС.

21. Удалить супернатант в прежнюю пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК).

22. Пробирку с суспензией клеток после негативной селекции инкубировать 8 минут.

23. Удалить супернатант - это и будет конечная фракция обогащенная ГСК методом ИМС.

ГСК мыши: на проточном цитометре уточняется содержание ГСК в полученной суспензии.

Отрицательные маркеры: Lin-; CD34.

Положительные маркеры: CD 38; Sca 1+; CD 117; CD 90 (низкий уровень).

Содержание ГСК 130 тыс. (0,87% от исходного содержания всех клеток крови). Жизнеспособность ГСК с использованием красителя трипанового синего составляет 83%.

Б. Действие согласно заявляемому способу.

Используя следующий состав коктейля для сепарации (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл) вместо БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА):

1. Забой лабораторных животных осуществляется методом шейной дистракции.

2. Стерилизация лабораторного животного проводится путем помещения мыши на 5 минут в 90% раствор этилового спирта.

3. В стерильных условиях осуществляется получение пуповинной крови.

4. Доводится объем крови до 1 мл, используя буфер для окрашивания, рекомендованный производителем (PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

5. Подсчет клеток в камере Горяева: В маленькую пробирку (объемом 2-3 мл), содержащую 400 мкл 3% уксусной кислоты, добавляется 20 мкл (разведение 1:20) суспензии клеток костного мозга и перемешивается.

6. Получена суспензию клеток, содержащая 24 млн кл./мл (в буфере для окрашивания: PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

7. Добавить мышиные антитела к CD16C/CD32 в соотношении 0,25 мкг/млн кл. (т.о. всего 6 мкг CD16C/CD32).

8. Инкубировать 15 мин на льду.

9. Добавить коктейль антител в концентрации 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 120 мкл коктейля антител).

10. Инкубировать 15 мин на льду.

11. Добавить коктейль для сепарации: (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл).

12. Центрифугировать при 300 g в течение 7 минут.

13. Полученный осадок клеток ресуспендировать в КС (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл) до объема 1 мл.

14. Добавить частицы для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 120 мкл частиц для сепарации).

15. Охлаждать 3 мин при -20°С.

16. Перенести меченые клетки в 5 мл пробирку Falcon.

17. Инкубировать 12 мин на ИМС.

18. Удалить супернатант в новую пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК).

19. Добавить 1 мл КС (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл).

20. Инкубировать 12 мин на ИМС.

21. Удалить супернатант в прежнюю пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК).

22. Пробирку с суспензией клеток после негативной селекции инкубировать 12 минут.

23. Удалить супернатант - это и будет конечная фракция обогащенная ГСК методом ИМС.

ГСК мыши: на проточном цитометре уточняется содержание ГСК в полученной суспензии.

Отрицательные маркеры: Lin-; CD34.

Положительные маркеры: CD 38; Sca 1+; CD 117; CD 90 (низкий уровень).

Содержание ГСК 320 тыс. (1,3% от исходного содержания всех клеток крови). Жизнеспособность ГСК с использованием красителя трипанового синего составляет 98%.

Пример №3

А: (Действие согласно протоколу производителя).

1. Забой лабораторных животных осуществляется методом шейной дистракции.

2. Стерилизация лабораторного животного проводится путем помещения мыши на 5 минут в 90% раствор этилового спирта.

3. В стерильных условиях осуществляется получение пуповинной крови.

4. Доводится объем крови до 1 мл, используя буфер для окрашивания, рекомендованный производителем (PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

5. Подсчет клеток в камере Горяева: В маленькую пробирку (объемом 2-3 мл), содержащую 400 мкл 3% уксусной кислоты, добавляется 20 мкл (разведение 1:20) суспензии клеток костного мозга и перемешивается.

6. Получена суспензия клеток, содержащая 10 млн кл/мл (в буфере для окрашивания: PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

7. Добавить мышиные антитела к CD16C/CD32 в соотношении 0,25 мкг/млн кл. (т.о. всего 2,5 мкг CD16C/CD32).

8. Инкубировать 15 мин на льду.

9. Добавить коктейль антител в концентрации 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 50 мкл коктейля антител).

10. Инкубировать 15 мин на льду.

11. Добавить 10-кратный избыточный объем однократный буфер для иммуномагнитной сепарации БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА) в соотношении 1:10.

12. Центрифугировать при 300 g в течение 7 минут.

13. Полученный осадок клеток ресуспендировать в БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА) до объема 1 мл.

14. Добавить частицы для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 50 мкл частиц для сепарации).

15. Охлаждать 30 мин при 6-12°С.

16. Перенести меченые клетки в 5 мл пробирку Falcon.

17. Инкубировать 8 мин на ИМС.

18. Удалить супернатант в новую пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК).

19. Добавить 1 мл БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА).

20. Инкубировать 8 мин на ИМС.

21. Удалить супернатант в прежнюю пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК).

22. Пробирку с суспензией клеток после негативной селекции инкубировать 8 минут.

23. Удалить супернатант - это и будет конечная фракция обогащенная ГСК методом ИМС.

ГСК мыши: на проточном цитометре уточняется содержание ГСК в полученной суспензии.

Отрицательные маркеры: Lin-; CD34.

Положительные маркеры: CD 38; Sca 1+; CD 117; CD 90 (низкий уровень).

Содержание ГСК 60 тыс. (0,6% от исходного содержания всех клеток крови). Жизнеспособность ГСК с использованием красителя трипанового синего составляет 81%.

Б. Действие согласно заявляемому способу.

Используя следующий состав коктейля для сепарации (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS +1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл) вместо БИМС (PBS+0,5% FBS+2 мМ ЭДТА):

1. Забой лабораторных животных осуществляется методом шейной дистракции.

2. Стерилизация лабораторного животного проводится путем помещения мыши на 5 минут в 90% раствор этилового спирта.

3. В стерильных условиях осуществляется получение пуповинной крови.

4. Доводится объем крови до 1 мл, используя буфер для окрашивания, рекомендованный производителем (PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

5. Подсчет клеток в камере Горяева: В маленькую пробирку (объемом 2-3 мл), содержащую 400 мкл 3% уксусной кислоты, добавляется 20 мкл (разведение 1:20) суспензии клеток костного мозга и перемешивается.

6. Получена суспензию клеток, содержащая 28 млн кл/мл (в буфере для окрашивания: PBS+3% FBS+0,1% NaN3).

7. Добавить мышиные антитела к CD16C/CD32 в соотношении 0,25 мкг/млн кл. (т.о. всего 7 мкг CD16C/CD32).

8. Инкубировать 15 мин на льду.

9. Добавить коктейль антител в концентрации 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 140 мкл коктейля антител).

10. Инкубировать 15 мин на льду.

11. Добавить коктейль для сепарации: (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл).

12. Центрифугировать при 300 g в течение 7 минут.

13. Полученный осадок клеток ресуспендировать в КС (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл) до объема 1 мл.

14. Добавить частицы для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM 5 мкл/млн кл. (т.о. всего 140 мкл частиц для сепарации).

15. Охлаждать 3 мин при -20°С.

16. Перенести меченые клетки в 5 мл пробирку Falcon.

17. Инкубировать 12 мин на ИМС.

18. Удалить супернатант в новую пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК).

19. Добавить 1 мл КС (PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков (пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/мл).

20. Инкубировать 12 мин на ИМС.

21. Удалить супернатант в прежнюю пробирку Falcon (суспензия, полученная с помощью негативной селекции, - содержит обогащенную фракцию ГСК).

22. Пробирку с суспензией клеток после негативной селекции инкубировать 12 минут.

23. Удалить супернатант - это и будет конечная фракция обогащенная ГСК методом ИМС.

ГСК мыши: на проточном цитометре уточняется содержание ГСК в полученной суспензии.

Отрицательные маркеры: Lin-; CD34.

Положительные маркеры: CD 38; Sca 1+; CD 117; CD 90 (низкий уровень).

Содержание ГСК 350 тыс. (1,25% от исходного содержания всех клеток крови). Жизнеспособность ГСК с использованием красителя трипанового синего составляет 95%.

Способ выделения гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) методом иммуномагнитной сепарации, заключающийся в выделении ГСК за счет удаления из суспензии, содержащей различные гемопоэтические клетки, элементов, не являющихся ГСК, отличающийся тем, что в качестве буфера для иммуномагнитной сепарации (БИМС) используют коктейль для сепарации (КС) следующего состава: PBS+2% раствор незаменимых аминокислот +2% FBS+1% раствор антибиотиков на 100 мл КС: пенициллин 100 ед./мл + стрептомицин 100 мкг/м, инкубирование клетки с частицами для сепарации Streptavidin Particles Plus - DM производят при - 20°С в течение 3 мин.
Источник поступления информации: Роспатент

Показаны записи 1-8 из 8.
10.02.2013
№216.012.2394

Способ выделения гемопоэтических стволовых клеток

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно, к выделению гемопоэтических стволовых клеток из пуповинной крови. Способ выделения гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) осуществляют методом непрямой иммуномагнитной сепарации с использованием инактивированной фетальной бычьей...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002474610
Дата охранного документа: 10.02.2013
27.02.2014
№216.012.a5ae

Медицинский клей для бесшовного соединения краев раны на основе реакции полимеризации

Изобретение относится к технологии получения медицинских клеев для склеивания биологических тканей. Препарат предназначен для местного применения на коже при проведении операций в хирургии и комбустиологии. Медицинский клей для бесшовного соединения биологических тканей, образующий адгезионный...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002508129
Дата охранного документа: 27.02.2014
20.07.2014
№216.012.e1bc

Способ активации регенерации миелоидной ткани старых лабораторных животных

Изобретение относится к области медицины и предназначено для активации регенерации миелоидной ткани старых лабораторных животных. Способ включает внутривенную аллогенную трансплантацию мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, выделенных из плаценты в количестве 6 млн клеток/кг....
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002523574
Дата охранного документа: 20.07.2014
10.08.2014
№216.012.e683

Способ повышения регенераторной активности эпителия кишечника крыс после лучевой нагрузки

Изобретение относится к экспериментальной медицине, в частности к разработке способа повышения регенераторной активности эпителия кишечника после лучевой нагрузки. Для этого крысам после лучевой нагрузки в дозе 3,0 Гр осуществляют внутривенное введение аллогенных мультипотентных мезенхиальных...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002524804
Дата охранного документа: 10.08.2014
10.06.2015
№216.013.4fc0

Способ восстановления селезенки после лучевой нагрузки

Изобретение относится к экспериментальной медицине, в частности разработке способов лечения лучевой болезни. Способ осуществляют путем проведения лабораторным мышам через час после облучения внутривенной аллогенной трансплантации мультипотентных мезенхиальных стромальных клеток (ММСК) и...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002551937
Дата охранного документа: 10.06.2015
10.11.2015
№216.013.8ac0

Антенна кассегрена

Изобретение относится к антенной технике. Антенна Кассегрена состоит из большого и малого параболических зеркал, выполняющих функцию рефлекторов и обладающих единой осью вращения, причем малое параболическое зеркало-рефлектор является гиперболической отражательной поверхностью по отношению к...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002567127
Дата охранного документа: 10.11.2015
12.01.2017
№217.015.5b0c

Микрополосковый излучатель

Изобретение относится к СВЧ-технике. Технический результат - снижение потерь принимаемой энергии при использовании заявленного микрополоскового излучателя в антенных решетках и повышение стабильности коэффициента стоячей волны по напряжению. Микрополосковый излучатель круговой поляризации,...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002589848
Дата охранного документа: 10.07.2016
29.12.2017
№217.015.f82d

Способ восстановления лимфоидной ткани селезенки лабораторных животных

Изобретение относится к медицине и предназначено для восстановления регенерации лимфоидной ткани селезенки в эксперименте. Для этого лабораторным животным (мышам) через 20 мин после облучения проводят внутривенную аллогенную трансплантацию мультипотентных стромальных клеток (ММСК) и...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002639404
Дата охранного документа: 21.12.2017
Показаны записи 11-20 из 22.
20.02.2014
№216.012.a0e7

Способ извлечения надпочечников с сохранением сосудистых ножек

Изобретение относится к медицине и может быть применимо для извлечения надпочечников. Удаляют комплекс органов грудной полости. Удаляют органы, расположенные ниже поджелудочной железы. Удаляют печень, селезенку и желудок. Проводят мобилизацию боковых отделов диафрагмы до наружных краев почек....
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002506906
Дата охранного документа: 20.02.2014
27.02.2014
№216.012.a5ae

Медицинский клей для бесшовного соединения краев раны на основе реакции полимеризации

Изобретение относится к технологии получения медицинских клеев для склеивания биологических тканей. Препарат предназначен для местного применения на коже при проведении операций в хирургии и комбустиологии. Медицинский клей для бесшовного соединения биологических тканей, образующий адгезионный...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002508129
Дата охранного документа: 27.02.2014
10.06.2014
№216.012.d007

Комбинированный гемостатический препарат для наружного применения

Изобретение относится к химико-фармацевтической промышленности и представляет собой гемостатическое средство, включающее комплекс аминокапроновой кислоты с трехвалентным железом, стабилизированный натрия хлоридом в изотонической концентрации. Изобретение предназначено для лечения ран, остановки...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002519026
Дата охранного документа: 10.06.2014
20.07.2014
№216.012.e11b

Способ диагностики ревматоидного артирита по наличию антител к модифицированному цинтруллинированному виментину (anti-mcv) в ротовой жидкости

Изобретение относится к медицине. Более подробно изобретение относится к диагностике ревматоидного артрита. Способ диагностики по настоящему изобретению заключается в определении содержания Anti-MCV в ротовой жидкости (в смешанной слюне), использовании для обработки полученных показателей...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002523413
Дата охранного документа: 20.07.2014
20.07.2014
№216.012.e1bc

Способ активации регенерации миелоидной ткани старых лабораторных животных

Изобретение относится к области медицины и предназначено для активации регенерации миелоидной ткани старых лабораторных животных. Способ включает внутривенную аллогенную трансплантацию мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, выделенных из плаценты в количестве 6 млн клеток/кг....
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002523574
Дата охранного документа: 20.07.2014
10.08.2014
№216.012.e683

Способ повышения регенераторной активности эпителия кишечника крыс после лучевой нагрузки

Изобретение относится к экспериментальной медицине, в частности к разработке способа повышения регенераторной активности эпителия кишечника после лучевой нагрузки. Для этого крысам после лучевой нагрузки в дозе 3,0 Гр осуществляют внутривенное введение аллогенных мультипотентных мезенхиальных...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002524804
Дата охранного документа: 10.08.2014
10.06.2015
№216.013.4fc0

Способ восстановления селезенки после лучевой нагрузки

Изобретение относится к экспериментальной медицине, в частности разработке способов лечения лучевой болезни. Способ осуществляют путем проведения лабораторным мышам через час после облучения внутривенной аллогенной трансплантации мультипотентных мезенхиальных стромальных клеток (ММСК) и...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002551937
Дата охранного документа: 10.06.2015
10.11.2015
№216.013.8ac0

Антенна кассегрена

Изобретение относится к антенной технике. Антенна Кассегрена состоит из большого и малого параболических зеркал, выполняющих функцию рефлекторов и обладающих единой осью вращения, причем малое параболическое зеркало-рефлектор является гиперболической отражательной поверхностью по отношению к...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002567127
Дата охранного документа: 10.11.2015
12.01.2017
№217.015.5b0c

Микрополосковый излучатель

Изобретение относится к СВЧ-технике. Технический результат - снижение потерь принимаемой энергии при использовании заявленного микрополоскового излучателя в антенных решетках и повышение стабильности коэффициента стоячей волны по напряжению. Микрополосковый излучатель круговой поляризации,...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002589848
Дата охранного документа: 10.07.2016
29.12.2017
№217.015.f82d

Способ восстановления лимфоидной ткани селезенки лабораторных животных

Изобретение относится к медицине и предназначено для восстановления регенерации лимфоидной ткани селезенки в эксперименте. Для этого лабораторным животным (мышам) через 20 мин после облучения проводят внутривенную аллогенную трансплантацию мультипотентных стромальных клеток (ММСК) и...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002639404
Дата охранного документа: 21.12.2017
+ добавить свой РИД