Результат интеллектуальной деятельности: БИОНАНОКОНЪЮГАТ ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ И ВЫДЕЛЕНИЯ НУКЛЕИНОВЫХ КИСЛОТ И СПОСОБ ЕГО ПОЛУЧЕНИЯ

Изобретение относится к биологии и медицине, а именно к созданию конъюгатов магнитная частица - нуклеиновая кислота, необходимых для молекулярно-генетической диагностики.

Создание новых эффективных систем и бионаногибридных конструкций для диагностики различных заболеваний и решения ряда других проблем представляет собой важнейшее направление современной медицины и биологии. Одной из главных задач при этом является создание конъюгатов, в частности, для последующего обнаружения и выделения из различных органов и тканей генетического материала (ДНК, РНК), на основе исследования которого и будет поставлен диагноз. Методы обнаружения и выделения нуклеиновых кислот должны обладать высокой чувствительностью и специфичностью, быть простыми и быстрыми, давать воспроизводимые результаты и обеспечивать высокую чистоту ДНК/РНК.

Наиболее перспективным методом обнаружения и выделения нуклеиновых кислот является метод магнитной сепарации, в котором в качестве сорбентов выступают магнитные наночастицы, смешанные в растворе с биологическими структурами и образующие с последними конъюгаты. В большинстве случаев такие частицы состоят из оксидов железа, поверхность которых покрыта различными веществами и функциональными группами, способствующими образованию конъюгатов. При наложении магнитного поля с достаточно большим градиентом магнитные частицы, создающие конъюгаты с нуклеиновыми кислотами (ДНК/РНК), могут быть отделены из раствора и подвергнуты дальнейшей обработке.

Основные преимущества использования магнитных наночастиц для систем обнаружения и выделения нуклеиновых кислот обусловлены следующим:

- магнитные наночастицы являются однодоменными, обладают суперпарамагнитным поведением и магнитными свойствами, необходимыми для выделения биологических объектов с помощью внешнего магнитного поля.

Задачей настоящего изобретения является создание бионаноконъюгата с высокой степенью селективности для выделения одноцепочечных специфических нуклеиновых кислот из раствора.

Поставленная задача решается тем, что в качестве основы бионаноконъюгата берут наноразмерную суперпарамагнитную частицу кобальтовой феррошпинели Co_xFe_3-xO₄, где 0.6<х≤0.98, полученную методом механохимического синтеза (RU 2471502, 2013), и для выделения нуклеиновой кислоты, содержащей олиго- или поли-A/dA последовательность, используют синтетический одноцепочечный олигонуклеотид 5′-dG_ndT_m, где n=5-30, m=10-35, один участок которого, состоящий из гуаниновых нуклеотидов, в присутствии фосфат-анионов в растворе специфически связан с поверхностью наночастицы, а другой - состоящий из тиминовых нуклеотидов, способен вступать в гибридизацию с олиго- или поли-A/dA нуклеотидными последовательностями, а для выделения из раствора, содержащего фосфат-анионы, специфической гетеронуклеотидной последовательности используют молекулу олигонуклеотида-адаптера, содержащую последовательность олиго-dA_x на 3′-конце, гибридизованную с тиминовыми нуклеотидами комплекса 5′-dG_ndT_m, где n=5-30, m=10-35, и участок на 5′-конце, комплементарный специфической нуклеотидной последовательности в растворе.

При n<5 связывание наночастицы с нуклеиновой кислотой является слабым. При n>30 доля выделенного продукта практически не изменяется и, таким образом, дальнейшее увеличение числа гуаниновых нуклеотидов не приводит к существенным преимуществам. Соответственно при m<10 связь между олигоdТ-«хвостом» бионаноконъюгата и комплементарной нуклеиновой кислотой является нестабильной при нормальных условиях (нестабильность формирующегося за счет водородных связей А-Т двухцепочечного гибрида при комнатной температуре), а при m>35 возникают трудности при последующем отделении выделяемой нуклеиновой кислоты от бионаноконъюгата (высокая температура плавления А-Т-связей).

По сравнению с другими техническими решениями предложенный бионаноконъюгат имеет преимущества, которые состоят в следующем:

а) Для создания бионаноконъюгатов используют наночастицы кобальтовой феррошпинели Co_xFe_3-xO₄, где 0.6≤х≤0.98 со средним диаметром в интервале 3-11 нм, полученные методом механохимического синтеза и обладающие суперпарамагнитным поведением.

В отличие от других методов химической конденсации при механохимическом синтезе воздействие интенсивной деформации (удар, трение) приводит к формированию в наночастицах «активных» неравновесных состояний, для которых характерны высокие упругие микронапряжения (Δd/d=(5.4-7.4)·10^-3), нарушения степени порядка в расположении разнородных ионов, изменение параметров решетки, аморфизация поверхностного слоя. Кристаллическая решетка таких наночастиц отличается большими смещениями ионов, химический состав в основном соответствует нестехиометрии, поэтому полученные механохимическим синтезом наночастицы обладают большой запасенной энергией и являются метастабильными и «активными». Можно полагать, что наличие «активных» неравновесных состояний облегчает образование конъюгатов между ДНК и катионами металлов на поверхности наночастицы.

Установлено, например, что по эффективности переноса ДНК в клетки in vitro при магнитофекции наночастицы, синтезированные механохимическим методом, заметно превосходят такие же по размеру наночастицы, полученные методом химического осаждения (М.А. Sukoyan, Е.А. Khrapov, E.N. Voronina et.al. Magnitofection of Human Somatic Cells with Magnetite and Cobalt Ferrospinel Nanoparticles/Bulletin in Experimental Biology and Medicine. 2013, v.154, №5, March, pp. 673-676).

б) Магнитная наночастица кобальтовой феррошпинели не требует покрытия, широко используемого в других технических решениях, так как предложенный химически синтезированный олигонуклеотид осуществляет прямое связывание непосредственно с поверхностью наночастицы за счет участка, представленного повтором из гуаниновых нуклеотидов. Применение магнитных наночастиц без покрытия приводит к повышению магнитных свойств, которые обычно снижаются при нанесении покрытий, увеличивает площадь поверхности для связывания с биомолекулами и позволяет более легко создать коллоидную систему. Одновременно в результате данной функционализации достигается блокирование адсорбционно-активных центров в отношении нуклеиновых кислот на поверхности наночастицы.

Установлено, что в случае использования наночастиц без покрытия процедура экстракции является простой, быстрой, дешевой и надежной, не требует применения органических растворов и ее можно легко автоматизировать (Saiyed Z.M., Ramchand. Extraction of Genomic DNA Using Magnetic Nanoparticles (Fe₃O₄) as a Solid-Phase Support/Americal Journal of Infectious Diseases 3(4): 225-229, 2007; Saiyed Z.M., Ramchand C.N., Telang S.D. Isolation of genomic DNA using magnetic nanoparticles as a solid-phase support/J. Phys.: Condens. Matter, v.20 (2008) 204153).

в) Предлагаемый бионаноконъюгат обеспечивает высокую степень селективности, близкую к 100% при выделении олиго- или поли A/dA нуклеотидных последовательностей из раствора, содержащего фосфат-анионы в концентрации (10±0.5)·10^-3 моль/л. После дополнительного присоединения молекулы-«адаптера» биоконъюгат обеспечивает такую же степень селективности при выделении специфических гетеронуклеотидных последовательностей. При этом важную роль играют фосфат-анионы, которые в выбранной концентрации предотвращают неспецифическое связывание.

Способ получения бионаноконъюгата для выделения одноцепочечных нуклеиновых кислот, заключающийся в том, что для выделения нуклеиновой кислоты, содержащей олиго- или поли-A/dA последовательность, берут наночастицы суперпарамагнитной кобальтовой феррошпинели Co_xFe_3-xO₄, где 0.6≤х≤0.98, полученные механохимическим синтезом, наночастицы промывают дистиллированной водой, готовят водную суспензию отмытых наночастиц, суспензию разделяют на фракции в виде осадка и надосадка, отбирают надосадок и смешивают с ним синтетический одноцепочечный олигонуклеотид 5′-dG_ndT_m, где n=5-30, m=10-35, и фосфат натрия в концентрации (10±0.5)·10^-3 моль/л, после чего смесь инкубируют до установления полного адсорбционного равновесия и выделяют бионаноконъюгат методом магнитной сепарации с последующим центрифугированием и промыванием, а для выделения гетеронуклеотидной последовательности в раствор, содержащий наночастицы кобальтовой феррошпинели, связанные с синтетическим одноцепочечным олигонуклеотидом 5′-dG_ndT_m, где n=5-30, m=10-35, и фосфат натрия в концентрации (10±0.5)·10^-3 моль/л, добавляют молекулы олигонуклеотида-«адаптера», содержащие последовательность олиго-dA_x на 3′-конце и участок на 5′-конце, комплементарный специфической гетеронуклеотидной последовательности в растворе, после чего смесь вновь инкубируют до установления полного адсорбционного равновесия и выделяют бионаноконъюгат методом магнитной сепарации с последующим центрифугированием и промыванием. При этом n предпочтительно равно = 20-25, a m предпочтительно равно 15-25.

Концентрационные границы содержания фосфата натрия в буферном растворе определяются следующими соображениями. При содержании фосфата натрия менее (10±0.5)·10^-3 моль/л участок олигонуклеотида, представленный тиминовыми нуклеотидами, может вступать в связывание с поверхностью наночастицы. Повышение концентрации фосфата натрия в растворе выше (10±0.5)·10^-3 моль/л может приводить к снижению плотности покрытия поверхности наночастицы.

Пример 1. Получение бионаноконъюгата.

Для приготовления суспензии вносят суперпарамагнитные наночастицы кобальтовой феррошпинели Co_0.9Fe_2.1O₄, полученные механохимическим синтезом, в 10 мМ трис (pH 5.0) до конечной концентрации 0.2 мг/мл. Обрабатывают суспензию 20 минут ультразвуком при частоте 22 кГц, мощности 25 Вт (Bandelin Sonopuls HD 2070) и центрифугируют при 13400 об/мин в течение минуты (Eppendorf MiniSpin) для осаждения агрегатов наночастиц. Отбирают надосадочную часть, представляющую собой суспензию наночастиц кобальтовой феррошпинели с концентрацией 0.15 мг/мл (pH 6.5).

Для получения бионаноконъюгата к 8/10 частей полученной суспензии наночастиц добавляют 1/10 объема водного раствора соответствующего олигонуклеотида состава dG₁₈dT₂₅ с концентрацией 50*10^-6 моль/л и 1/10 объема 10х фосфатно-солевого буфера (PBS) (10xPBS:1.37 Μ NaCl, 0.027 Μ KCl, 0.1 Μ Na₂HPO₄, 0.02 Μ ΚΗ₂ΡO₄, pH 7.4) и перемешивают на вортексе (BioSan FV-2400). Далее инкубируют реакционную смесь при нормальных условиях (температура окружающего воздуха 20±10°C, относительная влажность воздуха от 40 до 60%, атмосферное давление 760±20 мм рт.ст.) в течение 24 часов для установления полного адсорбционного равновесия. Полученный бионаноконьъюгат отделяют из раствора методом магнитной сепарации на магнитном штативе (Promega), центрифугируют в течение 15 минут при 13400 об/мин и дважды промывают бидистиллированной водой и трис-содержащим буфером.

На рисунке 1 представлены ИК-спектры наночастиц феррита кобальта (Co_0.9Fe_1.1O₄) после выдерживания в фосфатсодержащем буфере, олигонуклеотида (dG₁₈T₂₅) и бионаноконъюгата (dG₁₈T₂₅-Co_0.9Fe_1.1O₄), полученного согласно примеру 1.

ИК спектр получали в D₂O и Н₂O методом НПВО на алмазном кристалле (Nicolet 6700 Thermo). Присутствие в ИК-спектре бионаноконъюгата характеристических полос поглощения: феррита кобальта при 588 см^-1, обусловленную колебаниями связи металл-кислород в тетраэдрических кислородных междоузлиях феррита, а также олигонуклеотида при 1083 см^-1 и 1210 см^-1, обусловленную колебаниями симметричного и ассиметричного фосфата, и в области 1500-1700 см^-1, обусловленных колебаниями групп оснований, подтверждает формирование бионаноконъюгата. Наблюдаемые изменения положения полос поглощения на ИК-спектре бионаноконъюгатов по сравнению с несвязанным олигонуклеотидом (таблица 1) является следствием взаимодействия групп сахарофосфатного остова и оснований гуанина с заряженными атомами на поверхности наночастицы.

На рисунке 2 показана эффективность связывания олигонуклеотида dG₁₈T₂₅ с наночастицами различного состава. Видно, что наночастицы с содержанием кобальта в пределах 0.69-0.90 эффективно связывают олигонуклеотид из раствора (В_max=2.7±0.2, K_d=0.36±0.07·10^-6 М) и формируют нанобиоконъюгат.

Удельная намагниченность ансамбля бионаноконъюгатов (МАГНИТОМЕТР Н-04) составляет 20±0.4 Гс·см³/г. Небольшое снижение магнитных свойств по сравнению с исходным ансамблем наночастиц феррита кобальта (22 Гс·см³/г) является следствием снижения межчастичного взаимодействия в ансамбле наночастиц из-за увеличения расстояния между ними.

Пример 2. Получение бионаноконъюгата для выделения нуклеиновой кислоты, содержащей олиго(dA) последовательность на 3′-конце.

Бионаноконъюгат, полученный согласно примеру 1, после отмывок водой промывают буфером 0.5 Μ NaCl, 10 мМ трис (7.5-8.0) и растворяют в этом же буфере до концентрации 5 мг/мл. В пробирке типа эппендорф смешивают 20 мкл суспензии, содержащей бионаноконъюгат, 60 мкл буфера 0.5 Μ NaCl, 10 мМ трис (7.5-8.0), 10 мкл 10х фосфатно-солевого буфера (PBS) (10xPBS: 1.37 Μ NaCl, 0.027 Μ KCl, 0.1 Μ Na₂HPO₄, 0.02 Μ ΚΗ₂ΡΟ₄, pH 7.4) и 10 мкл водного раствора олигонуклеотида dΑ₂₅ 25 (5′-аааааааааааааааааааааааааа-3′). Перемешивают смесь на вортексе (BioSan FV-2400). Выдерживают 10 минут при нормальных условиях и снова встряхивают на вортексе. Осаждают на магнитном штативе (Promega) в течение 10 минут. Супернатант удаляют. Дважды промывают осадок буфером 0.8 Μ NaCl, 10 мМ трис (7.5-8.0). Добавляют 20 мкл воды.

На рисунке 3 показана эффективность связывания (А, нмоль/мг) синтетического олигонуклеотида, содержащего 25 остатков аденина (dA₂₅) из раствора 537 мМ NaCl, 8 мМ Трис, 2.7 мМ КСl, 10 мМ Na₂HPO₄, 2 мМ КН₂РO₄ (pH 7.5), при варьировании концентрации dA₂₅ от 0.25 до 5 мкмоль/л с использованием бионаноконъюгата. Эффективность последующей элюции в воде при прогревании до 70°C составила 96,0±0,8%.

На рисунке 4 показана эффективность связывания (А, нмоль/мг) синтетического олигонуклеотида, содержащего олиго(dA) последовательность на 3′-конце dN₂₃dA₂₅ (5′-tctggtaaagtggatattgttgcaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaa-3′) с использованием бионаноконъюгатов, полученных на основе наночастиц различного состава.

Пример 3. Выделение полиА⁺ мРНК с использованием нанобиоконъюгата.

После отмывок водой бионаноконъюгат промывают буфером 0,5 Μ NaCl, 10 мМ трис (7.5-8.0) и растворяют в этом же буфере до концентрации 5 мг/мл. В пробирке типа эппендорф смешивают 10 мкл суспензии, содержащей бионаноконъюгат, 70 мкл буфера 0,5 Μ NaCl, 10 мМ трис (7.5-8.0), 10 мкл 10х фосфатно-солевого буфера (PBS) (10xPBS: 1,37 Μ NaCl, 0,027 Μ KCl, 0,1 Μ Na₂HPO₄, 0,02 Μ ΚΗ₂ΡO₄, pH 7.4) и 10 мкл исследуемой пробы (тотальной РНК), препарат тотальной РНК предварительно прогревают при 65°C в течение 5 минут). Тщательно перемешивают смесь. Выдерживают 5 минут при нормальных условиях и снова перемешивают. Осаждают на магнитном штативе (Promega) в течение 5 минут. Супернатант удаляют. Дважды промывают осадок буфером 0,5 Μ NaCl, 10 мМ трис (7.5-8.0). Добавляют 20 мкл деионизованной воды (свободной от РНКаз), тщательно перемешивают и инкубируют при 70°C в течение 10 минут в твердотельном термостате (Термит, ДНК-технология). Осаждают бионаноконъюгат на магнитном штативе и отбирают супернатант, содержащий полиА⁺ мРНК, в чистую пробирку. Препарат мРНК может быть использован для дальнейших молекулярно-генетических манипуляций.

Препарат тотальной РНК из мононуклеаров венозной крови человека получали с использованием TRIzol-реагента (Life technologies) согласно инструкции фирмы производителя. Выделенную с применением бионаноконъюгата мРНК из препарата тотальной РНК использовали для синтеза кДНК с использованием набора для постановки реакции обратной транскрипции Mint-ревертаза (Евроген). Синтезированную кДНК применяли для ПЦР в режиме реального времени с использованием наборов для постановки ПЦР-РВ в присутствии SybrGreen I (Синтол) с использованием праймеров к мРНК/кДНК гена глицерофосфатдегидрогеназы. На рисунке 5 представлены кривые амплификации, полученные в результате постановки ПЦР-РВ (LightCycler 480, Roche). Для постановки реакции брали кДНК, синтезированную на матрице мРНК, выделенной с помощью бионаноконъюгата (кривая а) и тотальной РНК (кривая b). Кривые с, d, е, f - серия последовательных десятикратных разведений контрольной кДНК (1:10, 1:100, 1:1000, 1:10000).

Таким образом, реализуемое техническое решение - бионаноконъюгат - обеспечивает эффективное (>1.2 мкмоль/г) связывание с молекулами специфических нуклеиновых кислот, имеющих определенную последовательность нуклеотидов, в растворе, которые могут быть отделены (элюированы) от бионаноконъюгата с эффективностью не менее 95%. Эффективность элюции значительно превосходит максимальное значение данного показателя для прототипа (58%). Низкая эффективность элюции может служить источником ложноотрицательных результатов (невыявленных) при использовании в молекулярно-генетической диагностике. Способность бионаноконъюгата в отличие от прототипа связываться со специфическими молекулами ДНК/РНК позволяет использовать его для обнаружения диагностически значимых нуклеиновых кислот в образце, например с флуоресцентным или магнитно-резонансным детектированием.

Пример 4. Получение биоконъюгата для выделения специфической нуклеиновой кислоты (заданного состава) из смеси.

Бионаноконъюгат, полученный согласно примеру 1, промывают в буфере (10 мМ трис, 0,137 Μ NaCl, 0,0027 Μ КСl, 0,01 Μ Na₂HPO₄, 0,002 Μ KH₂PO₄, pH 7.4) и растворяют в этом же буфере до концентрации 5 мг/мл. В пробирке типа эппендорф смешивают 50 мкл суспензии содержащей бионаноконъюгат, 50 мкл олигонуклеотида-«адаптера» dN₂₃dA₂₅ 25·10^-6 Μ (5′-gcaacaatatccactttaccagaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaa-3′) и доводят объем буфером (10 мМ трис, 0,137 Μ NaCl, 0,0027 Μ КСl, 0,01 Μ Na₂HPO₄, 0,002 Μ KH₂PO₄, pH 7.4) до 500 мкл. Перемешивают смесь на вортексе (BioSan FV-2400). Выдерживают 15 минут при нормальных условиях и снова встряхивают на вортексе. Осаждают биоконъюгат магнитной сепарацией и центрифугированием. Супернатант удаляют. Дважды промывают осадок буфером (10 мМ трис, 0,137 Μ NaCl, 0,0027 Μ КСl, 0,01 Μ Na₂HPO₄, 0,002 Μ КН₂РO₄, pH 7.4). Растворяют в этом же буфере в конечном объеме 50 мкл.

10 мкл полученного бионаноконъюгата, гибридизованного с молекулой олигонуклеотида-«адаптера» dN₂₃dA₂₅, смешивают в пробирке типа эппендорф с 90 мкл смеси содержащей два типа олигонуклеотидов в концентрации от 0.5 до 0.7·10^-6 М, меченных различными флуоресцентными метками.

Смесь инкубируют при 37°C 20 минут. Осаждают биоконъюгат магнитной сепарацией и центрифугированием. Надосадок отбирают, осадок промывают дважды буфером: 10 мМ трис, 0,137 Μ NaCl, 0.0027 Μ КСl, 0,01 Μ Na₂HPO₄, 0.002 Μ KH₂PO₄, pH 7.4. Осадок ресуспендируют в воде и прогревают 15 минут при 70°C для элюции олигонуклеотида от бионаноконъюгата.

На рисунке 6 показана эффективность связывания (гибридизации) синтетических олигонуклеотидов Cy3-dN₂₃ (5′-tctggtaaagtggatattgt-/Cy3/-3′) и Cy5-dN₁₉ (5′-/Сy5/-aatggtgtctgagcgatgtg-3′) из смеси в буфере (10 мМ трис, 0,137 Μ NaCl, 0,0027 Μ КСl, 0,01 Μ Na₂HPO₄, 0,002 Μ KH₂PO₄, pH 7.4) с вариабельным участком молекулы-«адаптера» dN₂₃dA₂₅ (5′-gcaacaatatccactttaccagaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaa-3′), входящей в состав бионаноконъюгата.

Можно видеть, что эффективность связывания комплементарного вариабельному участку молекулы-«адаптера» олигонуклеотида Cy3-dN₂₃ достигает 99%, тогда как некомплементарный олигонуклеотид Cy5-dN₁₉ не связывается с биоконъюгатом при данных условиях.

На рисунке 7 приведены результаты электрофоретического анализа в 1,2% агарозном геле водных растворов олигонуклеотидов, выделенных с использованием бионаноконъюгата (элюция) (дорожки 1-3), супернатантов после инкубации смеси олигонуклеотидов с бионаноконюгатом (дорожки 4-6), исходных проб (дорожки 7-9) содержащих смесь комплементарного и некомплементарного олигонуклеотидов (контроль) в концентрации от 0.5 до 0.7·10^-6 М. Можно наблюдать, что Сy5-меченый олигонуклеотид, некомплементарный вариабельной части олигонуклеотида-«адаптера», остается в супернатанте, тогда как комплементарный Сy3-меченый олигонуклеотид связывается с биоконъюгатом и может быть в последующем отделен от биоконъюгата (элюирован) водой.

Пример 5. Получение бионаноконъюгата для обнаружения и выделения специфической нуклеиновой кислоты (олигонуклеотида заданного состава).

Бионаноконъюгат, полученный согласно примеру 1, промывают в буфере (10 мМ трис, 0,137 Μ NaCl, 0,0027 Μ КСl, 0,01 Μ Na₂HPO₄, 0,002 Μ KH₂PO₄, pH 7.4) и растворяют в этом же буфере до концентрации 5 мг/мл. В пробирке типа эппендорф смешивают 50 мкл суспензии содержащей бионаноконъюгат, 50 мкл олигонуклеотида-«адаптера» dN₂₁dA₂₅ в концентрации 25·10^-6 Μ (5′-aagcttatcagactgatgttgaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaa) и доводят объем буфером (10 мМ трис, 0,137 Μ NaCl, 0,0027 Μ КСl, 0,01 Μ Na₂HPO₄, 0,002 Μ KH₂PO₄, pH 7.4) до 500 мкл. Перемешивают смесь на вортексе (BioSan FV-2400). Выдерживают 15 минут при нормальных условиях и снова встряхивают на вортексе. Осаждают биоконъюгат магнитной сепарацией и центрифугированием. Супернатант удаляют. Дважды промывают осадок буфером (10 мМ трис, 0,137 Μ NaCl, 0,0027 Μ КCl, 0,01 Μ Na₂HPO₄, 0,002 Μ KH₂PO₄, pH 7.4). Растворяют в этом же буфере в конечном объеме 50 мкл.

10 мкл полученного бионаноконъюгата, гибридизованного с молекулой олигонуклеотида «адаптера» dN₂₁dA₂₅ (5′-aagcttatcagactgatgttgaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaaa-3′), смешивают в пробирке типа эппендорф с 90 мкл смеси, содержащей выбранный Сy3-dN₂₁ (5′-caacatcagtctgataagct-/Cy3/-3′), Cy3-dN₂₃ (5′-tctggtaaagtggatattgt-/Cy3/-3′) олигонукеотид в концентрации от 0.1 до 0.8·10^-6 М, меченный флуоресцеиновой меткой (Сy3). Смесь инкубируют при 37°C 20 минут. Осаждают бионаноконъюгат магнитной сепарацией и центрифугированием. Надосадок отбирают, осадок промывают дважды буфером: 10 мМ трис, 0,137 Μ NaCl, 0,0027 Μ КСl, 0,01 Μ Na₂HPO₄, 0,002 Μ KH₂PO₄, pH 7.4. Осадок ресуспендируют в воде и прогревают 15 минут при 70°C для элюции олигонуклеотида от бионаноконъюгата.

На рисунке 8 представлены результаты электрофоретического разделения проб, полученных в результате элюции, и супернатантов, полученных после выдерживания биоконъюгата с некомплементарным (дорожка 1 и 1s) и комплементарным (в концентрации от 0,1 до 0,7·10^-6 М) вариабельному участку молекулы-«адаптера» олигонуклеотидами (дорожка 2-8 и 2s-8s). Можно видеть, что при инкубации с некомплементарным олигонуклеотидом он не связывается с биоконъюгатом (дорожка 1) и остается в супернатанте (дорожка 1s), тогда как комплементарный вариабельному участку молекулы-«адаптера» олигонуклеотид эффективно связывается из раствора (дорожки 2s-8s) и может быть элюирован в последующем от биоконъюгата (дорожки 2-8). Эффективность последующей элюции в воде при прогревании до 70°C составила 96.0±0.8%.