×
10.02.2015
216.013.2716

Результат интеллектуальной деятельности: СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ ГИГАНТСКОЙ УСТРИЦЫ CRASSOSTREA GIGAS В ЧЕРНОМ МОРЕ

Вид РИД

Изобретение

№ охранного документа
0002541459
Дата охранного документа
10.02.2015
Аннотация: Способ выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море относится к марикультуре и предназначен для промышленного выращивания устриц в Черном море в контролируемых условиях. В способе выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море, кондиционирование производителей осуществляют в течение 24 ч путем содержания без корма с постоянной аэрацией воды. Серотонин, растворенный в стерильной морской воде, вводят в межстворчатую жидкость по 1 мл/особь в концентрации 0,003%. Через 15 минут после оплодотворения проводят селекцию яйцеклеток по размерам. При культивировании яйцеклеток поддерживают плотность 50 тыс.яйц./л, на ранних и поздних стадиях развития личинок - соответственно 20 тыс.лич./л и 10 тыс.лич/л, на стадии оседания - до 1 тыс.лич./л. На всех стадиях развития устриц обеспечивают кормом, причем на ранних стадиях развития корм состоит из Isochrysis galbana и Chaeíoceros calcitróos в концентрации до 100 тыс. кл./мл при соотношении клеток 2:1, на поздних включает микроводоросли Isochrysis galbana, Chaeíoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica в концентрации корма до 200 тыс.кл./мл в при соотношении клеток 2:1:1:1 соответственно, а на стадии педивелигера в состав корма дополнительно вводят микроводоросль Skeletonema costatum (2 части) при общей концентрации 200-250 тыс.кл/мл. При кондиционировании производителей обмен фильтрованной морской воды производят дважды в сутки. Для селекции по размерам яйцеклетки собирают на мельничное сито с диаметром ячеи 32 мкм и промывают фильтрованной и стерилизованной морской водой. Эмбриональное развитие яйцеклеток проводят в стерилизованной морской воде с аэрацией. Разработаны оптимальные условия для получения личинок и выращивания гигантской устрицы в питомнике. При выращивании проводится селекция, как производителей, так и личинок и контролируется весь цикл культивирования. Благодаря оптимизации всех этапов культивирования гигантской устрицы С. gigas появляется возможность создания полноцикличного устричного хозяйства для производства товарной устрицы в Черном море.

Предполагаемое изобретение относится к марикультуре и предназначено для промышленного выращивания устриц в Черном море в контролируемых условиях.

Гигантская устрица Crassostrea gigas является основным объектом культивирования во многих станах Европы, Азии, Африки, Америки и Австралии. Этот вид устриц отличается высоким темпом роста, устойчивостью ко многим болезням, высокими вкусовыми и лечебно-профилактическими качествами. В 70-е годы 20 ст. в Черном море запасы черноморской устрицы Ostrea edilus были почти полностью уничтожены раковинной болезнью. В этот период была осуществлена государственная программа интродукции гигантской устрицы Crassostrea gigas из Дальнего Востока. Однако до настоящего времени гигантская устрица не стала промысловым видом и не образовала природных поселений на Черном море из-за невозможности достижения необходимой численности производителей без массового подращивания молоди в питомниках.

Известен способ выращивания устрицы Crassostrea gigas (см Силкин Ю.А., Силкина Е.Н., Давидович Н.А., Давидович О.И., Орленко А.Н. Интродукция устрицы Crassostrea gigas в районе Карадага // Карадаг. История, биология, археология. -Симферополь: «СОНАТ», 2001. - С. 273-280). В июне партию половозрелых моллюсков (213 экз.) переносили в лабораторию. Т.к. большинство четырехлетних особей уже отнерестились в естественных условиях, то их стимулировали через сутки после доставки в аквариальную. Двухлетних устриц отсаживали на кондиционирование продолжительностью 20 суток, а затем подвергали стимуляции. Нерест стимулировали либо раствором серотонина концентрации 0,02% в мышцу или в мантийную полость (с одновременным повышением температуры воды до 28°С или без повышения); либо повышением температуры воды; либо внесением в воду раствора суспензии гонад самцов. После получения половых клеток проводили осеменение в 20-литровых аквариумах из оргстекла. Для очищения воду с гаметами пропускали через шелковое или капроновое газ-сито с диаметром ячеи 96 мкм.

Дробящиеся яйцеклетки переносили в пластиковый лоток объемом 100 л, а затем на стадии трохофоры в пластиковые бассейны объемом 5, 6 и 25 м3. Личинок и спат устриц выращивали в бассейнах с небольшим протоком воды на естественном корме, без дополнительного внесения микроводорослей. В качестве субстрата для осаждения личинок использовали створки мидий. Когда личинки переходили на стадию педивелигера, коллекторы выставляли в бассейны и, в течение недели, происходило оседание личинок. Через месяц спат размером 3,5÷5,0 мм выставляли в море. Доращивание до товарных размеров проводили в море на устричном носителе, глубина постановки которого составляет 14-20 м.

Известный способ обладает рядом недостатков:

- концентрация серотонина является питательной средой для микроорганизмов. Т.к. от момента введения раствора до вымета половых продуктов происходит 1-4 часа, а скорость размножения микроорганизмов увеличивается с повышением температуры воды, то происходит интенсивное осеменение микроорганизмами среды и яйцеклеток;

- оплодотворенные яйцеклетки не промываются стерильной морской водой, что является причиной низкой выживаемости личинок на ранних стадиях развития;

- введение шприцом раствора серотонина в мышцу моллюсков травмирует мягкие ткани и приводит к гибели производителей;

- т.к. диаметр яйцеклетки составляет 50-70 мкм, то при очистке суспензии оплодотворенных яйцеклеток через газ-сито с диаметром ячеи 96 мкм проходят яйцеклетки с лишними сперматозоидами, что приводит к полиспермии и нарушениям эмбрионального развития;

- развитие оплодотворенных яйцеклеток происходит в воде, где проводили стимуляцию нереста производителей. Содержание биогенов в такой воде значительно превышает предельно-допустимые концентрации;

- концентрация микроводорослей в морской воде значительно ниже необходимой для полноценного питания личинок и спата устриц. Забор воды непосредственно из моря и без осуществления предварительной очистки приводит к тому, что вместе с микроорганизмами поступают личинки зоо- и меропланктона, что создает пищевую конкуренцию личинкам устриц и влияет на их выживаемость;

- было получено 20 тыс. спата моллюсков, что составляет 0,4% от начального значения, и это свидетельствует об очень низкой выживаемости;

- применяемые в схеме устричного носителя рамки с устрицами препятствуют линейному росту моллюсков, их дыханию и фильтрации.

В основу изобретения «Способ выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море» поставлена задача путем разработки оптимальных условий нереста, выращивания личинок и получения жизнестойкой молоди в искусственных условиях, обеспечить возрождение устриеводства на Черном море.

Поставленная задача реализуется следующим образом.

В способе выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море, кондиционирование производителей осуществляют в течение 24 ч путем содержания без корма с постоянной аэрацией воды. Серотонин, растворенный в стерильной морской воде, вводят в межстворчатую жидкость по 1 мл/особь в концентрации 0,003%. Через 15 минут после оплодотворения проводят селекцию яйцеклеток по размерам. При культивировании яйцеклеток поддерживают плотность 50 тыс.яйц./л, на ранних и поздних стадиях развития личинок - соответственно 20 тыс.лич./л и 10 тыс.лич/л, на стадии оседания - до 1 тыс.лич./л. На всех стадиях развития устриц обеспечивают кормом, причем на ранних стадиях развития корм состоит из Isochrysis galbana и Chaetoceros calcitrans в концентрации до 100 тыс. кл./мл при соотношении клеток 2:1, на поздних включает микроводоросли Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricomutum, Tetraselmis suecica в концентрации корма до 200 тыс.кл./млв при соотношении клеток 2:1:1:1 соответственно, а на стадии педивелигера в состав корма дополнительно вводят микроводоросль Skeletonema costatum (2 части) при общей концентрации 200-250 тыс.кл/мл. При кондиционировании производителей обмен фильтрованной морской воды производят дважды в сутки. Для селекции по размерам яйцеклетки собирают на мельничное сито с диаметром ячеи 32 мкм и промывают фильтрованной и стерилизованной морской водой. Эмбриональное развитие яйцеклеток проводят в стерилизованной морской воде с аэрацией.

Преимущества применяемой стимуляции нереста состоят в том, что производители остаются живыми после стимуляции, происходит нерест только зрелых сперматозоидов и яйцеклеток, что обеспечивает высокую выживаемость личинок. Раствор серотонина концентрации 0,003% является оптимальным для стимуляции нереста гигантской устрицы, т.к. концентрация на порядок ниже не вызывает стимуляцию, а на порядок выше - создает питательную среду для микроорганизмов, находящихся в мантийной полости устриц. Проведение селекции обеспечивает прохождение раннего эмбриогенеза без нарушений, а также сортировку яйцеклеток по размерам. Многофакторные эксперименты, проведенные авторами, позволили определить оптимальные величины плотности посадки, состава корма и концентрации микроводорослей, которые обеспечивают высокую выживаемость, темп роста и влияют на продолжительность выращивания.

Предполагаемое изобретение поясняется фотографиями. Фиг. 1 - Пластина из пищевой пластмассы - субстрат для оседания личинок гигантской устрицы. Фиг. 2 -Коллектор из пластмассовых чашечек для оседания личинок гигантской устрицы. Фиг. 3 - садок для подращивания устриц в море до товарного размера.

Способ реализуется следующим образом.

Кондиционирование производителей. Созревание производителей происходит в природных условиях в садках на глубине 2-3 метров при оптимальной плотности посадки. Сбалансированное питание и естественный ход температуры дают возможность получить половые продукты высокого качества, что впоследствии обеспечивает высокую выживаемость личинок.

Маточное стадо составляют из производителей разного возраста для обеспечения баланса полов, поскольку среди младших возрастных групп преобладают самцы, а среди старших - самки. Для избежания инбридинга количество производителей должно быть не менее 100 экз. Во второй декаде июня, когда температура воды на глубине месторасположения устриц составляет 18°С, а луна входит в фазу полнолуния (нерест устриц в природе происходит во время прилива), производителей переносят в питомник для кондиционирования. Очищенных производителей распределяют по сетке, размещенной в прямоугольной емкости на высоте 10 см от дна. Емкость предварительно заполняется фильтрованной морской водой с температурой 20°С. Производителей содержат без корма с постоянной аэрацией воды. Обмен воды производят дважды в сутки. В течение этого периода у производителей очищается кишечник и жабры, что обеспечивает получение чистых половых продуктов. Стимуляция нереста и получение половых продуктов. Нерест устриц начинается на вторые сутки. Первыми начинают нереститься самцы; их переносят в отдельную емкость от самок. При необходимости срочного получения половых продуктов, или при невозможности получения их первым способом (когда, например, луна находится в других фазах), применяют стимуляцию нереста производителей. Растворенный в фильтрованной морской воде серотонин (C14H19N5O2·H2SO4), в концентрации 0,003%, вводят при помощи шприца в межстворчатую жидкость по 1 мл/особь. Ткани устрицы-производителя при этом не травмируются.

Проведение оплодотворения. Через 15 минут после оплодотворения яйцеклетки собирают на мельничное сито с диаметром ячеи 32 мкм и промывают фильтрованной морской водой, прошедшей стерилизацию. Дальнейшее эмбриональное развитие проходит в стерильной морской воде с аэрацией при плотности 50 тыс.яйц./л.

Выращивание личинок гигантской устрицы. Температура воды в течение периода выращивания поддерживают на уровне 21-24°С, что соответствует температуре, при которой происходит размножение и развитие личинок в природных условиях. Оптимальной для роста личинок на стадии велигера является плотность посадки до 20 тыс.лич./л. Корм состоит из Isochrysis galbana и Chaetoceros calcitrans в концентрации до 100 тыс.кл./мл при соотношении клеток 2:1.

На поздних стадиях развития оптимальной является плотность посадки до 10 тыс.лич/л, концентрация корма - до 200 тыс.кл./мл и состав микроводорослей Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricomutum, Tetraselmis suecica в соотношении клеток 2:1:1:1. На стадии педивелигера в состав корма вводят еще одну микроводоросль- Skeletonema costatum (2 части).

Выращивание личинок проводят в цилиндрических емкостях из пластика, объемом 100 литров при постоянной аэрации и ежедневной подаче корма. В первую неделю культивирования личинок замена воды производят ежедневно, в последующие недели - через двое суток.

Оседание личинок. Для оседания устриц используют коллекторы в виде пластин или чашечек из пищевой пластмассы (фиг. 1, 2). Перед оседанием субстраты выдерживают в море в течение 1 месяца, затем проводят их очистку и дезинфекцию. Через 2 недели после оседания, спат размером 2-3 мм выставляют в море для доращивания. Применяемый тип субстрата позволяет разделять спат без потерь, независимо от плотности оседания. Темпы роста спата, прикрепленного к пластинам, в 1,6 раза выше, чем на осколках раковин мидий.

Проведение оседания. Педивелигеров размерами 325 мкм переносят в емкость с подготовленными коллекторами. Плотность личинок составляет 1 тыс. лич./л; концентрация корма - 200-250 тыс.кл./мл. Состав микроводорослей аналогичен предыдущему. Интенсивность аэрации воды снижена. Полную замену воды проводят через двое суток. По истечении 3 суток оседание заканчивается. Коллекторы с осевшим спатом переносят в емкость для подращивания.

Подращивание спата устриц в море до товарного размера. В конце октября -начале ноября, при достижении размеров 35-40 мм, спат гигантской устрицы снимают с субстрата, разделяют и переносят в садки на доращивание. В качестве садков используют обшитые делью пластмассовые ящики с отверстиями. Размеры садков -37×28×10 см (I тип) и 47×28×11 см (И тип). Садки промываются морской водой со всех сторон, устрицы свободно открывают створки для дыхания и питания; свободное расположение устриц не мешает их росту.

При оптимальных условиях выращивания устрицы достигают товарного размера 85- 120 мм за 1,5-2 года.

Пример реализации способа.

В апреле 2003 года из всей выборки устриц Crassostrea gigas, выращиваемых на мидийно-устричной ферме в бухте Карантинная, проводили отбор производителей разного возраста (1-3 года) в количестве 140 экз. Устриц распределяли по садкам (по 35-40 экз.) и подвешивали в море на глубине 2-3 м. В июне, при повышении температуры воды до 18°С, половину производителей перенесли в лабораторию, провели механическую очистку раковин от обрастания и поместили в емкость объемом 250 л. Устриц содержали без корма в течение 24 часов в стерильной морской воде с аэрацией при температуре 20,4°С. За это время дважды проводили смену морской воды.

Стимуляция нереста. Одновременно применили температурную и химическую стимуляцию нереста (т.к. луна находилась в фазе роста). Температуру воды повысили до 23°С. Десяти устрицам в межстворчатую жидкость был введен раствор серотонина концентрации 0,003% в количестве 1 мл/особь. Через 1,5 часа первыми начали нереститься стимулированные серотонином самцы, затем остальные устрицы. Самок и самцов рассаживали по отдельным емкостям. Через час после начала нереста яйцеклетки собрали на газ-сито с размером ячеи 32 мкм и перенесли в 10 л емкость со стерильной морской водой с аэрацией. Туда добавили суспензию сперматозоидов (200 мл) молочного цвета. Через 15 мин. оплодотворенные яйцеклетки снова собрали на газ-сито, промыли стерильной морской водой и перенесли в другую емкость. Раннее эмбриональное развитие устриц проходило при плотности посадки 50 тыс. эмбрионов/л в объеме 20 литров при температуре 22°С. Оценивали зрелость яйцеклеток, а также процесс оплодотворения и раннего эмбрионального развития при помощи микроскопа МБИ-6.

Выращивание личинок. Через сутки при помощи газ-сита (56 мкм) велигеров перенесли в стерильную морскую воду с аэрацией. Плотность посадки личинок составила 10 тыс.лич./л; кормили золотистой микроводорослью Isochrysis galbana концентрации 50 тыс.кл./мл в течение 3 дней, затем постепенно увеличивали концентрацию до 100 тыс.кл./мл, добавляя одну часть Chaetoceros calcitrans. В течение первой недели обмен воды проводили ежедневно при помощи газ-сита (84-140 мкм в зависимости от размеров личинок), затем через день. Стадия велигера продолжалась 8-10 дней; прирост составил до 10 мкм/сут при выживаемости личинок 82%. На стадии великонхи личинок содержали при плотности посадки 5 тыс.лич./л и температуре воды до 24°С. В состав корма постепенно вводили другие виды микроводорослей (Phaeodactilum tricomutum, Tetraselmis suecica) концентрации от 150 до 200 тыс.кл./мл. Продолжительность этой стадии - 14-17 суток. Среднесуточный прирост личинок составил 15-19 мкм/сут. при выживаемости 60,2%. Стадия педивелигера продолжалась 3-5 суток. В состав корма была введена еще одна микроводоросль Sceletonema costatum (2 части), а концентрация корма увеличена до 250 тыс.кл./мл. Выживаемость педивелигеров до 25%.

Оседание личинок. Педивелигеров собирали на газ-сито с размером ячеи 210 мкм и перенесли в подготовленную емкость с субстратами для оседания (створки раковин мидии и чашки из пищевой пластмассы). Плотность посадки педивелигеров - 1 тыс/л; состав и концентрация корма аналогичны предыдущему. Оседание продолжалось 3 суток. При полной замене воды на вторые сутки, было выявлено, что оседание завершилось.

Подращивание спата._Спат подращивали в течение 2 недель. Подачу корма осуществляли два раза в сутки, суммарная концентрация увеличена в два раза. Состав микроводорослей аналогичный предыдущему. Смену воды проводили ежедневно. Температура воды - до 25°С. Среднесуточный прирост спата составил 110-190 мкм. При размерах спата 2-5 мм, коллекторы были выставлены в море на доращивание. Чтобы сохранить спат от опадания и выедания рыбами, на коллекторы одевали рукава, сшитые из дели (размер ячеи 1 см).

Разделение спата. В конце октября - начале ноября спат снимали с субстрата, разделяли по одному экземпляру и распределяли по садкам. Некоторые условия выращивания и линейно-весовые характеристики представлены в Таблице. Количество спата определяли «объемным методом», который заключается в определении среднего количества особей в 6 выборках, отобранных цилиндрическим стаканом объема 1,5 л. Суммарное количество спата составило около 65 тыс. или 6,5% от изначального количества яйцеклеток.

Таблица

Оптимальные условия содержания гигантской устрицы при доращивании в море

Преимущества предлагаемого способа выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море заключаются в том, что разработаны оптимальные условия для получения личинок и выращивания гигантской устрицы в питомнике. При выращивании проводится селекция, как производителей, так и личинок и контролируется весь цикл культивирования. Благодаря оптимизации всех этапов культивирования гигантской устрицы С. gigas появляется возможность создания полноцикличного устричного хозяйства для производства товарной устрицы в Черном море.


СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ ГИГАНТСКОЙ УСТРИЦЫ CRASSOSTREA GIGAS В ЧЕРНОМ МОРЕ
СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ ГИГАНТСКОЙ УСТРИЦЫ CRASSOSTREA GIGAS В ЧЕРНОМ МОРЕ
СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ ГИГАНТСКОЙ УСТРИЦЫ CRASSOSTREA GIGAS В ЧЕРНОМ МОРЕ
Источник поступления информации: Роспатент

Показаны записи 11-20 из 30.
10.02.2015
№216.013.2711

Питательная среда для культивирования штамма возбудителя рожи свиней erysipelothrix rhuisipathie

Питательная среда для культивирования штамма возбудителя рожи свиней Erysipelothrix rhuisipathie, относится к общей биотехнологии и ветеринарной микробиологии и может быть использована для приготовления микробиологических питательных сред для наращивания биомассы штамма возбудителя рожи свиней....
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541454
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2712

Способ культивирования одноклеточной зеленой водоросли haematococcus pluvialis для получения астаксантина

Изобретение относится к способу культивирования одноклеточной зеленой водоросли Haematococcus pluvialis для получения астаксантина, предусматривающему индукцию биосинтеза астаксантина в монадных вегетативных клетках причем культуру, выращенную на питательной среде МОНМ-1, в состоянии...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541455
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2713

Способ биологической оценки токсичности морской среды

Способ биологической оценки токсичности морской среды относится к биологическим способам оценки экологического риска и анализа загрязнения водной среды и может быть использован в марикультуре, водной токсикологии, рыбоводстве. В способе в качестве биологических тест-объектов используются...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541456
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2714

Способ определения влияния токсичности сточных вод на водные соленые среды

Способ определения влияния токсичности сточных вод на водные соленые среды относится к водной токсикологии и предназначен для оценки токсичности морской среды, содержащей сточные воды. Способ состоит из определения показателей роста культуры морской одноклеточной водоросли в тестируемой воде и...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541457
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2715

Способ культивирования каланоидных копепод calanus euxinus (черноморского калянуса)

Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) относится к области морской аквакультуры и может быть использован для проведения экспериментальных работ по морской биологии, физиологии и биохимии и для биологического тестирования в области морской...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541458
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2718

Способ диагностики и профилактики проктекозиса черноморских мидий в условиях марикультуры

Способ диагностики и профилактики проктэкозиса черноморских мидий в условиях марикультуры. Изобретение относится к биотехнологии и предназначено для диагностики и профилактики паразитарного заболевания черноморской мидии Mytilus galloprovincialis на мидийных фермах. У мидий изучают клинические...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541461
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2719

Способ идентификации живых и мертвых организмов мезозоопланктона в морских пробах

Изобретение относится к способу идентификации живых и мертвых организмов мезозоопланктона в морских пробах, который включает отбор пробы, крашение организмов соответствующими красителями, визуальную оценку интенсивности окраски особей под микроскопом, которую выполняют одновременно с...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541462
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.271a

Способ получения лечебно-профилактической композиции

Изобретение относится к области биотехнологий, а точнее к средствам получения из морских моллюсков композиции лечебно-профилактического действия, которая может быть использована в геронтологической практике для профилактики начальных форм атеросклероза у пациентов пожилого возраста. Способ...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541463
Дата охранного документа: 10.02.2015
27.03.2015
№216.013.34d6

Способ получения питательной основы микробиологических сред

Способ получения питательной основы микробиологических сред относится к биотехнологии. Способ предназначен для получения основы для приготовления микробиологических питательных сред из сырья морского генеза и может быть использован в медицинской и технической микробиологии, в...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002545010
Дата охранного документа: 27.03.2015
10.04.2015
№216.013.40e7

Способ получения транс-фукоксантинола

Изобретение относится к способу получения транс-фукоксантинола из кристаллического фукоксантина, который включает применение липазы, полученной из поджелудочной железы свиньи, растворение фукоксантина в этиловом спирте до полного растворения, введение альбумина и хлористого кальция в раствор,...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002548103
Дата охранного документа: 10.04.2015
Показаны записи 11-20 из 33.
10.02.2015
№216.013.2711

Питательная среда для культивирования штамма возбудителя рожи свиней erysipelothrix rhuisipathie

Питательная среда для культивирования штамма возбудителя рожи свиней Erysipelothrix rhuisipathie, относится к общей биотехнологии и ветеринарной микробиологии и может быть использована для приготовления микробиологических питательных сред для наращивания биомассы штамма возбудителя рожи свиней....
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541454
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2712

Способ культивирования одноклеточной зеленой водоросли haematococcus pluvialis для получения астаксантина

Изобретение относится к способу культивирования одноклеточной зеленой водоросли Haematococcus pluvialis для получения астаксантина, предусматривающему индукцию биосинтеза астаксантина в монадных вегетативных клетках причем культуру, выращенную на питательной среде МОНМ-1, в состоянии...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541455
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2713

Способ биологической оценки токсичности морской среды

Способ биологической оценки токсичности морской среды относится к биологическим способам оценки экологического риска и анализа загрязнения водной среды и может быть использован в марикультуре, водной токсикологии, рыбоводстве. В способе в качестве биологических тест-объектов используются...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541456
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2714

Способ определения влияния токсичности сточных вод на водные соленые среды

Способ определения влияния токсичности сточных вод на водные соленые среды относится к водной токсикологии и предназначен для оценки токсичности морской среды, содержащей сточные воды. Способ состоит из определения показателей роста культуры морской одноклеточной водоросли в тестируемой воде и...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541457
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2715

Способ культивирования каланоидных копепод calanus euxinus (черноморского калянуса)

Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) относится к области морской аквакультуры и может быть использован для проведения экспериментальных работ по морской биологии, физиологии и биохимии и для биологического тестирования в области морской...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541458
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2718

Способ диагностики и профилактики проктекозиса черноморских мидий в условиях марикультуры

Способ диагностики и профилактики проктэкозиса черноморских мидий в условиях марикультуры. Изобретение относится к биотехнологии и предназначено для диагностики и профилактики паразитарного заболевания черноморской мидии Mytilus galloprovincialis на мидийных фермах. У мидий изучают клинические...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541461
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.2719

Способ идентификации живых и мертвых организмов мезозоопланктона в морских пробах

Изобретение относится к способу идентификации живых и мертвых организмов мезозоопланктона в морских пробах, который включает отбор пробы, крашение организмов соответствующими красителями, визуальную оценку интенсивности окраски особей под микроскопом, которую выполняют одновременно с...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541462
Дата охранного документа: 10.02.2015
10.02.2015
№216.013.271a

Способ получения лечебно-профилактической композиции

Изобретение относится к области биотехнологий, а точнее к средствам получения из морских моллюсков композиции лечебно-профилактического действия, которая может быть использована в геронтологической практике для профилактики начальных форм атеросклероза у пациентов пожилого возраста. Способ...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002541463
Дата охранного документа: 10.02.2015
27.03.2015
№216.013.34d6

Способ получения питательной основы микробиологических сред

Способ получения питательной основы микробиологических сред относится к биотехнологии. Способ предназначен для получения основы для приготовления микробиологических питательных сред из сырья морского генеза и может быть использован в медицинской и технической микробиологии, в...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002545010
Дата охранного документа: 27.03.2015
10.04.2015
№216.013.40e7

Способ получения транс-фукоксантинола

Изобретение относится к способу получения транс-фукоксантинола из кристаллического фукоксантина, который включает применение липазы, полученной из поджелудочной железы свиньи, растворение фукоксантина в этиловом спирте до полного растворения, введение альбумина и хлористого кальция в раствор,...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002548103
Дата охранного документа: 10.04.2015
+ добавить свой РИД