Результат интеллектуальной деятельности: СПОСОБ И УСТРОЙСТВО ДЛЯ МОДЕЛИРОВАНИЯ ИНФИЦИРОВАННОЙ РАНЫ СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ПОЛОСТИ РТА В ЭКСПЕРИМЕНТЕ

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии и патофизиологии.

Известны различные способы моделирования гнойных ран на коже и слизистой у экспериментальных животных.

Известен способ создания инфицированной раны методом нанесения острой механической травмой посредством наружного разреза кожи посередине щеки длинной 3 мм. Тупым путем раздвигают щечную мышцу и проходят в подслизистый слой переднего отдела щеки [1].

Недостатком данного метода является травматичность создания раны, отсутствие в ране микрофлоры полости рта животного.

Известен способ создания инфицированной раны методом воспроизведения асептического воспаления мягких тканей щеки путем подслизистого введения 0,1 мл 50% масляного раствора скипидара [1].

Недостатком данного метода является травматичность создания раны, наличие химического некроза тканей, недостаточная доступность для прижизненной диагностики, отсутствие в ране микрофлоры полости рта животного.

Существует способ моделирования инфицированной кожной раны на экспериментальных животных. Для этого иссекают кожный покров с последующим подшиванием краев раны к подлежащим тканям. При этом каждый угол раны дополнительно прошивают отдельным диагональным швом. Образовавшийся струп и некротизированные ткани иссекают в пределах здоровых тканей. Затем рану обрабатывают антисептиком и промывают физиологическим раствором. После этого на обработанную поверхность раны под угловые диагональные швы устанавливают полупроницаемую мембрану, под которую вводят бактериальную взвесь, содержащую 0,5 мл E.coli 1*10⁹ и 0,5 мл Ps.aeraginosa 1*10⁹. Способ обеспечивает получение модели инфицированной кожной раны с заданной бактериальной обсемененностью, по своим характеристикам максимально приближенной к реальному клиническому течению раневого процесса [2].

Недостатком данного способа является изоляция раневого процесса от собственной микрофлоры макроорганизма, что не соответствует объективности наблюдаемого раневого процесса. Наблюдается искусственная ишемизация краев раны, что не способствует проявлению адекватной полноценной местной иммунологической реакции.

Известен способ нанесения на центр слизистой твердого неба экспериментальных животных круглых ран диаметром 5 мм. Динамику заживления ран оценивают планиметрически и патоморфологически, после выведения животных из эксперимента с выделением препарата верхней челюсти [3].

Недостатками данного метода являются: наличие скальпированной раны распространяющейся на все слои слизистой оболочки полости рта, что не позволяет имитировать естественный травматический процесс; трудность создания раны в полости рта и прижизненного контроля за раной, отсутствие заданной бактериальной обсемененности, максимально приближенной к реальному клиническому процессу, трудность забора морфологического материала, требующего выведения животного из эксперимента.

Данный способ взят за прототип.

Целью является моделирование естественного раневого процесса на слизистой оболочке полости рта животных и создание устройства для обеспечения анатомической доступности исследуемой области и стандартизации раневой поверхности.

Эта цель достигается тем, что рану слизистой оболочки наносят на внутренней поверхности нижней губы животного по средней линии, накладывая на нижнюю губу оригинальный ретрактор-зажим, состоящий из двух пластин, помещаемых на кожную и слизистые части нижней губы, соединенных пружинным шарниром и переходящих в рукоятки ретрактора-зажима; пластина, накладываемая на слизистую часть нижней губы, имеет отверстие диаметром 5 мм с заостренными краями, пластина, накладываемая на кожную часть губы, имеет шарообразный выступ диаметром 3,5 мм, высотой 2 мм; при помощи зажима типа Бильрот браншами фиксируют участок слизистой оболочки полости рта площадью 2 мм², проворачивая слизистую вокруг продольной оси на 360°, производят отрыв в строну оператора, на полученную стандартную рану наносят культивированную бактериальную взвесь в объеме 2 мл.

Полезное устройство поясняется графическим материалом. На фигуре 1 изображены две пластины, одна из которых (2) помещается на кожную часть нижней губы, вторая пластина (1) помещается на слизистую часть нижней губы. Пластины соединены пружинным шарниром (3) и переходят в рукоятки (4). Пластина (1) имеет отверстие диаметром 5 мм с заостренными краями, пластина (2) имеет шарообразный выступ диаметром 3,5 мм, высотой 2 мм. Положительный эффект от использования предложенного способа и устройства выражается в том, что они позволяют моделировать естественный раневой процесс на слизистой оболочке полости рта животных, обеспечивают анатомическую доступность исследуемой области, устройство обеспечивает стандартизацию раневой поверхности. Сравнение предложенного способа с другими, известными в области медицины, показало его соответствие критериям изобретения.

Достижения результата нового способа подтверждены примерами, проведенными на кафедре челюстно-лицевой хирургии и стоматологии Самарского Государственного Медицинского Университета.

Способ представлен следующими примерами.

Пример 1. Под общим наркозом (Золетил, Рометар) произведена фиксация ассистентом нижней челюсти экспериментального животного (Белой крысы линии Вистар). Оператором нанесена стандартная рваная рана на внутренней поверхности нижней губы по средней линии. На нижнюю губу наложен оригинальный ретрактор-зажим. При помощи зажима типа Бильрот зафиксирован участок слизистой оболочки полости рта площадью 2 мм², который провернут вокруг продольной оси на 360°, произведена мобилизация подслизистого слоя, произведен отрыв в строну оператора. Получена рваная рана слизистой оболочки нижней губы площадью 5 мм². Произведена ирригация раны культивированной бактериальной взвесью в объеме 2 мл. На сроках 1-14 дней планиметрически оценена динамика раневого процесса при воздействии экспериментальной фармацевтической композиции.

Пример 2. Под наркозом (Золетил, Рометар) произведена фиксация ассистентом нижней челюсти экспериментального животного (Белой крысы линии Вистар). Оператором нанесена стандартная рваная рана на внутренней поверхности нижней губы по средней линии. На нижнюю губу наложен оригинальный ретрактор-зажим. При помощи зажима типа Бильрот зафиксирован участок слизистой оболочки полости рта площадью 2 мм², который провернут вокруг продольной оси на 360°, произведена мобилизация подслизистого слоя, произведен отрыв в строну оператора. Получена рваная рана слизистой оболочки нижней губы площадью 5 мм². Произведена ирригация раны культивированной бактериальной взвесью в объеме 2 мл. На сроке 7 дней животное выведено из эксперимента. Произведен забор участка нижней губы. Патоморфологически изучены ткани животного при воздействии экспериментальной фармацевтической композиции.

Способ может применяться и широко использоваться в экспериментальной медицине по изучению эффективности влияния новых фармацевтических препаратов на раневой процесс слизистой оболочки полости рта экспериментальных животных.

ИСТОЧНИКИ ИНФОРМАЦИИ

1. Стоматология №2, 1992. Л.А.Хоменко, Б.В.Антонишин, Ж.И.Рахний. Экспериментальное изучение влияния Биополимеров на течение воспалительного процесса слизистой оболочки полости рта, с.20-23. УДК 616.31-018.73-002-02: 615.462-092.9-07.

2. Патент РФ №2010114127/14, G09B 23/28 / Григорьев Георгий Евгеньевич (RU), Лепехова Светлана Александровна (RU), Гольдберг Олег Аронович (RU), Коваль Елена Владимировна (RU), Зарицкая Лариса Васильевна от 09.04.2010.

3. Стоматология №4, 2010. А.И.Воложин, В.В.Гемонов, Д.В.Кабалоева, Б.Ю.Суражев. Экспериментальное обоснование эффективности применения рекомбинантного эпидермального фактора роста в лечении ран слизистой оболочки полости рта при иммунодефицитном состоянии, с.4-6.