Результат интеллектуальной деятельности: Штамм О N 2311/Забайкальский/2016 вируса ящура Aphtae epizooticae типа О для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа О

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии и может быть использовано для контроля антигенной и иммуногенной активности противоящурных вакцин, а также при разработке и изготовлении средств диагностики и специфической профилактики ящура типа О.

Ящур - это острое, контагиозное, вирусное заболевание парнокопытных животных, проявляющееся лихорадкой, везикулярными (афтозными) поражениями слизистой оболочки ротовой полости, бесшерстных участков кожи головы, вымени, венчика, межкопытной щели и сопровождающееся нарушением движения [1].

Ящур относится к особо опасным трансграничным заболеваниям животных и подлежит обязательной нотификации. Для этого возбудителя характерна тенденция к широкому распространению и эпизоотическому течению. Болезнь сопровождается большими потерями животноводческой продукции, затрудняет коммерческие операции и хозяйственную деятельность [2].

Вирус ящура относится к семейству Picornaviridae, роду Aphtovirus. Он имеет 7 антигенных типов, большое количество подтипов и множество штаммов [1, 3, 4].

Возбудитель ящура обладает значительной антигенной изменчивостью штаммов в пределах одного серотипа, которая выявляется в различные временные промежутки и на разных территориях и зависит от видового состава восприимчивого поголовья, его иммунного статуса и множества других различных факторов. Антигенная изменчивость вируса ящура обусловлена заменами аминокислот в полипептидных фрагментах (антигенных эпитопах), экспонированных на поверхности капсидных белков. Изменения, которые сохраняются в последующем поколении, становятся постоянными и отражаются в модификации нуклеотидной последовательности генома вируса.

Сдвиги антигенного спектра, соответствующие обновлению структуры нового полевого изолята, могут варьировать от незначительных, улавливаемых моноклональными антителами, до существенных, регистрируемых с помощью традиционных поликлональных иммуноглобулинов. Изменение антигенных свойств природного изолята с большой вероятностью вызывают ослабление специфического иммунитета, индуцированного негомологичным антигеном. При этом затрудняется штаммоспецифическая диагностика полученных изолятов вируса ящура. Проблема отбора и подготовка новых производственных штаммов вируса ящура является одной из главных в системе мер профилактики ящура.

В результате возникает необходимость создания новых средств диагностики и специфической иммунопрофилактики.

Известны штаммы вируса ящура типа О, использовавшиеся в качестве производственных на территории России в течение последних 50 лет. К ним относятся следующие штаммы: O₁ №1618 Чечено-Ингушский, выделенный в 1966 году; O₁ №194, выделенный в 1957 году в Волгоградской области. Указанные штаммы использовались для получения диагностикумов и противоящурных вакцин, применявшихся в различных регионах страны, в настоящее время поддерживаются в коллекции штаммов микроорганизмов ФГБУ «ВНИИЗЖ».

Известен штамм типа О №1734/Приморский/2000, выделенный 13.04.2000 г. от свиней в ОПХ «Степное» с. Элитное Уссурийского района Приморского края [5, 6].

Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей показал, что штамм О №1734/Приморский/2000 принадлежит к Паназиатской генетической линии вируса ящура типа О. Паназиатский вирус вызвал пандемию ящура в 1999-2000 годах в большинстве стран Азии, в том числе во Вьетнаме, Японии, Корее, Монголии, а также Армении и Грузии [4]. Опустошительная эпизоотия ящура в Великобритании в 2001 г. также была вызвана паназиатским вирусом. Исследуемый вирус имеет наиболее высокий уровень гомологии (98,74%) с изолятами О Вьетнам/99 и О Тайвань/99. Производственный штамм №1734 О/Приморский-2000- ДЕП используется в Российской Федерации в качестве производственного при изготовлении средств специфической профилактики и диагностики, применяемых на всей территории России и в странах-членах СНГ.

Известны штаммы О/Тайвань 3/97, О №2222/Тайвань/2012 генетической линии Cathay. В настоящее время вирус ящура данной генетической линии регистрируется на территории Юго-Восточной Азии.

В 2010 г. в Японии, Южной Корее, Гонконге и континентальном Китае вспышки ящура типа О были вызваны вирусом топотипа Юго-Восточная Азия, относящимся к генетической линии Муа-98 [2].

Вирусный изолят, послуживший источником для получения штамма О №2147/Приморский/2012, был выделен в марте 2012 года от больного крупного рогатого скота в селе Усачевка Хорольского района Приморского края. Данный производственный штамм принадлежит к топотипу Средний Восток-Южная Азия генетической линии О PanAsia.

В мае 2014 г. была зарегистрирована вспышка ящура генетической линии Муа-98 на территории ООО «Мерси Трейд», деревня Прохоры Спасского района Приморского края в буферной зоне РФ. Изолят вируса ящура, выделенный от больных животных, послужил источником производственного штамма О №2212/Приморский/2014.

В 2015-2016 гг. широкое распространение в мире получил вирус ящура типа O/ME-SA/Ind-2001d. Вирус ящура данной генетической линии был зарегистрирован в Саудовской Аравии, Объединенных Арабских Эмиратах, Иране, Непале, Таиланде, Турции, Армении.

В ноябре-декабре 2016 г. вспышки ящура были зарегистрированы в противоящурной буферной зоне Российской Федерации на территории СП «Молодежнинское» Приаргунского района Забайкальского края, где из имевшихся 322 голов КРС разного возраста заболело 172 головы.

По результатам сравнительного анализа нуклеотидных последовательностей выделенный изолят вируса ящура принадлежит к генетической линии Ind-2001 вируса ящура типа О, который значительно отличается от производственного штамма вируса ящура типа О, применяемого для вакцинации в противоящурной буферной зоне РФ.

Следует отметить, что вирус ящура генетической линии О Ind-2001 был выделен на территории Российской Федерации впервые.

В связи с этим возникла необходимость получить новый производственный штамм из эпизоотического изолята вируса ящура серотипа О для обеспечения безопасности территории Российской Федерации и сопредельных государств от этого возбудителя.

Проблема, на решение которой направлено настоящее изобретение, заключается в расширении арсенала производственных штаммов вируса ящура серотипа О, обладающих высокой инфекционной, антигенной и иммуногенной активностью в нативном виде и сохраняющих антигенную и иммуногенную активность после инактивации, пригодных для контроля антигенной и иммуногенной активности вакцин, изготовления чувствительных и высокоспецифичных диагностикумов и высокоиммуногенных вакцинных препаратов, гомологичных эпизоотическому вирусу, появившемуся на территории России в 2016 г.

Указанная проблема решена путем получения штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/ 2016 для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа О.

Изолят вируса ящура, послуживший источником для получения штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016, был выделен в декабре 2016 года от больных ящуром КРС, находящихся на территории падь «Широкая», сельского поселения «Молодежнинское» Приаргунского района Забайкальского края (экспертиза №2311). Производственный штамм ВЯ О №2311/3абайкальский/2016 получен путем последовательных пассажей на чувствительных гетеро- и гомологичных культурах клеток.

Штамм ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 депонирован 08 августа 2017 года в Коллекцию штаммов микроорганизмов Федерального государственного бюджетного учреждения «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»), под регистрационным номером: штамм ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 (производственный), (контрольный КРС - К-КРС), (контрольный свиной - К-СВ).

Экспериментально подтверждена возможность использования штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 для изготовления средств диагностики и профилактики ящура типа О.

Сущность изобретения пояснена на графическом изображении. Представлена дендрограмма, отражающая филогенетические взаимоотношения штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 с эпизоотическими и вакцинными штаммами вируса ящура серологического типа О. Дендрограмма основана на сравнении полных нуклеотидных последовательностей гена VP1.

Сущность изобретения пояснена следующими перечнями последовательностей:

SEQ ID NO:1 представляет последовательность нуклеотидов гена белка VP1 штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016;

SEQ ID NO: 2 представляет последовательность аминокислот гена белка VP1 штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016.

Штамм О №2311/Забайкальский/2016 характеризуется следующими признаками и свойствами.

Морфологические признаки:

Штамм ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 относится к семейству Picornaviridae, роду Aphtovirus, серотипу О и обладает морфологическими признаками, характерными для возбудителя ящура: форма вириона икосаэдрическая, размер 23-25 нм. Вирион состоит из молекулы РНК, заключенной в белковую оболочку. Белковая оболочка состоит из 32 капсомеров, расположенных в кубической симметрии.

Антигенные свойства

По своим антигенным свойствам штамм ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 относится к серотипу О. Вирус стабильно нейтрализуется гомологичной антисывороткой. Вирус не проявляет гемагглютинирующей активности (ГА-активности). У переболевших животных в сыворотке крови образуются специфические антитела, выявляемые в иммуноферментном анализе (ИФА) и реакции микронейтрализации (РМН).

Методом нуклеотидного секвенирования была определена первичная структура гена VP1 штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 и выведена первичная структура белка VP1. Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей показал, что штамм ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 принадлежит к генетической линии Ind-2001 топотипа Ближний Восток-Южная Азия.

Антигенное родство штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 с производственными штаммами вируса ящура O₁ Manisa, О №1734/Приморский/2000, О PanAsia2, О/Тайвань 3/97, О №2222/Тайвань/2012, О №2102/Забайкальский/2010, О №2147/Приморский/2012 и О №2212/Приморский/2014 изучено в РМН.

Результаты исследований в РМН представлены в таблице 1. Антигенное соответствие (r₁) составило для O₁ Manisa - 0,41; О PanAsia2 - 0,85; О №2102/Забайкальский/2010 - 0,44; О №2147/Приморский/2012 - 0,47; О/Тайвань 3/97 - 0,07; О №2222/Тайвань/2012 - 0,12 и О №2212/Приморский/2014 - 0,33.

При значении r₁>0,3 полевой изолят и производственный штамм являются родственными, при значении r₁<0,3 полевой изолят отличается от производственного штамма.

Биотехнологические характеристики

Штамм ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 репродуцируется в первичной монослойной культуре клеток почки свиньи (СП), перевиваемых культурах клеток: почки сибирского горного козерога (ПСГК-30), почки свиньи (IB-RS-2), почки сирийского хомячка (ВНК-21). В течение 18-24 часов инкубирования урожай вируса в указанных культурах клеток достигает значений от 5,78 до 6,45 lg ТЦД₅₀/см³. При высокой множественности заражения (1-5 ТЦД/клетка) вызывает ЦПД через 5 часов. Сохраняет исходные характеристики при пассировании в клеточных культурах на протяжении 3 пассажей (срок наблюдения).

Гено- и хемотаксономическая характеристики

Штамм ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 вируса ящура типа О является РНК-содержащим вирусом с молекулярной массой 7×10⁶ Д.

Нуклеиновая кислота представлена одноцепочной линейной молекулой молекулярной массой 2,8×10⁶ Д. Вирион имеет белковую оболочку, состоящую из четырех основных белков VP₁, VP₂, VP₃ и VP₄. Липопротеидная оболочка отсутствует.

Основным антигенным белком является VP₁. В вирионе содержится приблизительно 31,5% РНК и 68,5% белка. Вирионная РНК является инфекционной и участвует в образовании белков-предшественников в инфицированных клетках. Предшественники, в свою очередь, расщепляются с образованием более стабильных структурных и неструктурных полипептидов вируса. Из 8 неструктурных полипептидов, накапливающихся в инфицированных клетках, один (VР_66а) является РНК-, зависимой РНК-полимеразой, участвующей в репликации РНК новых вирионов.

Физические свойства

Масса вириона составляет 8,4×10^-18 г. Коэффициент седиментации 146S в градиенте сахарозы. Плавучая плотность 1,45 г/см³.

Устойчивость к внешним факторам

Штамм ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 устойчив к эфиру, хлороформу, фреону, ацетону и другим органическим растворителям и детергентам. Наиболее стабилен при рН 7,4-7,6. Сдвиги рН как в кислую, так и в щелочную сторону ведут к инактивации вируса. Чувствителен к формальдегиду, УФ-облучению, γ-облучению, высоким температурам.

Дополнительные признаки и свойства

Реактогенность - реактогенными свойствами не обладает.

Патогенность - патогенен для парнокопытных животных, новорожденных мышат, морских свинок.

Вирулентность - вирулентен для естественно-восприимчивых животных при контактном, аэрозольном и парентеральном заражении.

Стабильность - сохраняет исходные биологические свойства при пассировании в чувствительных биологических системах в течение 3 пассажей на перевиваемой культуре клеток IBRS-2 (срок наблюдения).

При испытании было проведено 3 последовательных пассажа штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 в перевиваемой культуре клеток IBRS-2. Для определения биологической активности проводили титрование вируса каждого пассажа в перевиваемой культуре клеток IBRS-2.

Сущность предлагаемого изобретения пояснена примерами его использования, которые не ограничивают объем изобретения.

Пример 1

Вирусный изолят, послуживший источником для получения штамма О ВЯ О №2311/Забайкальский/2016, был выделен в ФГБУ «ВНИИЗЖ» из проб афтозного патологического материала, полученных в ноябре 2016 года от подозреваемых в заболевании ящуром КРС (падь «Широкая» сельского поселения «Молодежнинское» Приаргунского района Забайкальского края (экспертиза №2311). Пробы афтозного материала от КРС поступили в ФГБУ «ВНИИЗЖ» 30 ноября 2016 года.

При выделении вируса с целью получения его однородной популяции, обладающей оптимальными биотехнологическими свойствами, использовали комплекс биологических, вирусологических и биохимических методов, предусмотренных методическими указаниями по выявлению и идентификации штаммов вируса ящура [7].

Биологические и вирусологические методы включали в себя выделение и адаптацию вируса ящура.

Выделение вируса проводили на культуре первично трипсинизированных клеток СП, перевиваемых линиях клеток ПСГК-30, IB-RS-2, ВНК - 21 с последующей адаптацией (3 пассажа). Для постановки биопроб на первичных и перевиваемых культурах клеток их выращивали на соответствующих питательных средах, в стационарных условиях во флаконах с площадью поверхности 25 см², отмывали от ростовой среды и заражали 10% суспензией афтозного материала (множественность заражения составляла 1-10 ТЦД₅₀ на клетку), приготовленной в растворе Хенкса с 0,5% гидролизата лактальбумина (ГЛА) и антибиотиками по стандартной рецептуре. Для удаления микрофлоры и балластных клеточных компонентов суспензию предварительно обрабатывали 10% раствором хлороформа. После 30-минутного контакта при 37°С во флаконы вносили по 5 см³ поддерживающей среды и инкубировали при 37°С до появления ЦПД культур клеток. При наличии ЦПД (округление клеток, повышение их оптической плотности, дегенерация и отделение клеток от стекла) флаконы подвергали замораживанию-оттаиванию, очистке клеточной взвеси хлороформом и центрифугированию при 3000 g в течение 15 мин. Полученный вируссодержащий материал использовали для последующих пассажей и исследования в РСК и ИФА на наличие вирусного антигена, при этом использовали коммерческие типоспецифические сыворотки, хранящиеся в музее штаммов ФГБУ «ВНИИЗЖ» и «Набор для выявления антигена вируса ящура в ИФА», изготовленный ФГБУ «ВНИИЗЖ». Вирус считался адаптированным к культурам клеток, если в течение 18-24 часов проявлялось 90-100% ЦПД в монослое клеточных культур.

Адаптация эпизоотического изолята О №2311/Забайкальский/2016 к различным клеточным линиям наступала на уровне 3 пассажей. Результаты адаптации вируса к различным клеточным культурам представлены в таблице 2.

Данные, приведенные в таблице 2, свидетельствуют о высокой адаптационной способности штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 к использованным клеточным культурам.

Вирусный препарат был исследован в реакции РСК с целью идентификации его типовой принадлежности (таблица 3).

Проведена проверка штамма на стерильность, отсутствие контаминации бактериальной, грибной микрофлорой и микоплазмами, а также посторонними вирусами в ГГЦР и ОТ-ПЦР.

Приведенные в таблице 3 результаты свидетельствуют о том, что в афтозном материале экспертизы №2311 выявлен антиген вируса ящура типа О в разведении 1:4 в РСК.

Контаминация бактериальной и грибной микрофлорой, микоплазмами и посторонними вирусами отсутствует.

Пример 2.

Проведена оценка биологических свойств штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 при репродукции в перевиваемой суспензионной клеточной линии ВНК-21/2-17.

Штамм ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 репродуцировали в суспензионной перевиваемой культуре клеток из почки новорожденного сирийского хомячка ВНК-21/2-17. В качестве поддерживающей среды использовали раствор Эрла без внесения сыворотки, с добавлением ферментативного гидролизата мышц сухого (ФГМС), гидролизата белков крови сухого (ГБКС) и антибиотиков при рН среды 7,4-7,6. Клеточную линию заражали вирусом из расчета 0,002-0,06 ТЦД₅₀/клетка.

Культивирование вируса осуществляли при температуре 35-37°С. Цитопатическое действие вируса, соответствующее 90-95%, достигалось через 15,95±0,86 ч. После этого репродукцию вируса ящура прекращали, полученную суспензию контролировали на стерильность и содержание 146S и 75S компонентов. Концентрация 146S+75S компонентов вируса ящура в суспензии должна составлять не менее 0,5 мкг/см³. Значения титра инфекционной активности вируса, а также концентрации общего вируспецифичного белка и иммуногенных компонентов штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 отражены в таблице 4, из данных которой видно, что при средней концентрации клеток ВНК-21/2-17, равной 3,22±0,26 млн клеток/см³, дозе заражения 0,002-0,06 ТЦД₅₀/клетка и продолжительности репродукции вируса 15,95±0,86 ч титр инфекционной активности возбудителя ящура находился в диапазоне 6,50-8,00 lg ТЦД₅₀/см³ (среднее значение - 7,25±0,61 lg ТЦД₅₀/см³), концентрация общего вирусного белка составляла 2,54±0,19 мкг/см³, содержание 146S+75S компонентов - 1,67±0,54 мкг/см³ (75,97±1,50%).

Пример 3.

Для получения сывороток ящурных типо- и штаммоспецифических для серологических реакций используют антиген из штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016, репродуцированный в монослойной культуре клеток ПСГК-30. Вируссодержащую суспензию концентрируют в 100 раз добавлением 8-10% полиэтиленгликоля (ПЭГ) м.м. 6000, очищают от балластных примесей добавлением 10% хлороформа. Очищенный вирус инактивируют аминоэтилэтиленимином (АЭЭИ) в концентрации 0,025-0,05% при значении рН 8,0-8,3.

Инактивированный концентрат антигена в смеси с равным объемом масляного адъюванта типа неполного адъюванта Фрейнда вводят морским свинкам в объеме 1,0 см³ внутримышечно. Через 21 и 7 дней иммунизацию повторяют и через 10 дней после последнего введения антигена животных обескровливают. Индивидуальные пробы сыворотки крови проверяют на типовую специфичность и активность в РСК в соответствии с методическими рекомендациями по выявлению и идентификации штаммов вируса ящура [7].

После этого готовят серию штаммоспецифической сыворотки путем смешивания типоспецифических индивидуальных проб сыворотки одинаковой активности. Штаммовую специфичность серийного препарата определяют в одно- и двусторонних реакциях с гомо- и гетерологичными антигенами.

После консервирования азидом натрия (1:5000) и выдерживания при температуре 4°С в течение 30 дней полученную сыворотку фасуют во флаконы по 0,5-1,0 см³ и высушивают методом сублимации под вакуумом.

Способом, описанным в примере 3, была приготовлена 1 серия сыворотки ящурной типо- и штаммоспецифической для серологических реакций, характеристика которой представлена в таблице 5.

Данные, приведенные в таблице 5, свидетельствуют о том, что получена диагностическая сыворотка, по специфической активности отвечающая требованиям ГОСТ 25384.

Пример 4

Для получения антигена ящурного штаммоспецифического для серологических реакций используют штамм ВЯ О №2311/Забайкальский/2016, адаптированный к культуре клеток перевиваемых линий IB-RS-2. Для адаптации используют вируссодержащий материал в виде 10% афтозной суспензии. Пассирование проводят в течение 3-5 последовательных пассажей. Полученный вирус используют для наработки вирусного сырья. Заражение клеточной культуры и сбор вирусного материала проводят по общепринятой методике.

Полученную вируссодержащую суспензию концентрируют в 100 раз добавлением (%) 8-10 ПЭГ. Полученный концентрат инактивируют АЭЭИ, фасуют во флаконы и высушивают методом сублимации под вакуумом.

Указанным способом была приготовлена 1 серия антигена ящурного штаммоспецифического для серологических реакций, характеристики которой приведены в таблице 6.

Результаты исследований, приведенные в таблице 6, свидетельствуют, что получены диагностические антигены, специфическая активность которых соответствует требованиям ГОСТ 25384.

Пример 5.

Проведена оценка иммуногенной и протективной активности инактивированной эмульсионной вакцины из штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 вируса ящура.

Контроль иммуногенной и протективной активности вакцины инактивированной эмульсионной из штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 осуществляли следующим образом. Для проверки иммуногенной активности препарата использовали 17 голов КРС массой 200÷250 кг, доставленных из благополучных по ящуру зон. Первой группе животных из 5 голов КРС ввели вакцину внутримышечно в цельном виде. Второй группе животных из 5 голов КРС ввели внутримышечно разведение вакцины на фосфатно-буферном растворе в соотношении 1:4 и третьей группе из 5 голов в разведении 1:16. Четвертая группа из 2 голов осталась без вакцинации.

Объем прививной дозы составил 2,0 см³. На 21 день после вакцинации у 15 вакцинированных и 2 контрольных голов КРС взяли пробы крови и провели контрольное заражение животных введением под слизистую языка суспензии вируса ящура типа О №2311/Забайкальский/2016 в дозе 10^4,0 ИД₅₀/0,2 см³.

Результаты испытания вакцины инактивированной эмульсионной, против ящура типа О из штамма ВЯ О №2311/Забайкальский/2016 на КРС представлены в таблице 7.

Антигенную активность вакцины контролировали по уровню вируснейтрализующих антител в сыворотке крови в РН на монослое первично трипсинизированной культуры клеток СП. На 21 день после вакцинации уровень вируснейтрализующих антител в РН у КРС, привитых цельной вакциной, составил 6,80±0,33 log₂.

Через 7 дней после заражения провели патологоанатомическое исследование КРС. Заболели 2 контрольных животных, 1 животное, привитое разведением вакцины 1:16.

ИмД₅₀ вакцины составила 0,09 см³. Прививная доза вакцины содержала 22,0 ПД₅₀ в прививном объеме 2,0 см³, что свидетельствует об эффективности препарата. Такая вакцина считается иммуногенной и пригодной для практического применения.

Источники информации

1. Бурдов А.Н., Дудников А.И., Малярец П.В. и др. Ящур. / Под ред. А.Н. Бурдова. - М., Агропромиздат, 1990, 320 с.

2. Southeast Asian Foot-and-Mouth Disease Viruses in Eastern Asia / N.J. Knowles, J.J. He, Y. Shang [et al.] // Emerg Infect Dis. - 2012. - V. 18(3): P. 499-501.

3. Рёрер X. Ящур. Пер. с нем. Г.А. Сурковой. / Под ред. и с предисл. канд. вет. наук. П.В. Малярца. - М.: Колос, 1971, 432 с.

4. Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я., Соловьев Б.В. и др. Вирусные болезни животных. - М., ВНИИТИБП, 1998, С. 532-548.

5. Иммунобиологические свойства эпизоотического штамма вируса ящура типа О №1734 «Приморский-2000» / В.К. Спирин, А.И. Егорова, С.Р. Кременчугская [и др.] // Труды Федерального центра охраны здоровья животных. - Владимир, 2007. - Т. 5. - С. 52-57.

6. Пат. РФ №2204599, C12N 7/00, А61К 39/135, 20.05.2003 г.

7. Методические указания по выявлению и идентификации штаммов вируса ящура / Гусев А.А., Захаров В.М., Шажко Ж.А. [и др.]. Владимир, 2002, 31 с.