×
12.01.2017
217.015.5b72

Результат интеллектуальной деятельности: СПОСОБ СРАВНИТЕЛЬНОЙ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА ВОДНОЙ СРЕДЫ ПО СОДЕРЖАНИЮ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ

Вид РИД

Изобретение

№ охранного документа
0002589896
Дата охранного документа
10.07.2016
Аннотация: Изобретение относится к области экологии и охраны окружающей среды, а именно способу контроля водной среды. Для этого собирают макрофиты и подготавливают пробы для определения в них содержания тяжелых металлов. В качестве биоиндикатора используют микроводоросли эпифитона. Для повышения точности способа микроводоросли эпифитона тщательно смывают с талломов макрофитов и фильтруют, используя капроновый фильтр с диаметром не более 100 мкм. Отфильтрованную пробу отстаивают, затем осадок количественно переносят в фарфоровую чашку и высушивают при 85°С. Сухой остаток растворяют в азотной кислоте и выпаривают. Содержание тяжелых металлов в пробе проводят методом атомной адсорбции. Полученные данные сравнивают с данными условно-фонового района. Изобретение позволяет быстро и качественно определить загрязнение водной акватории тяжелыми металлами. 2 з.п. ф-лы, 1 табл., 12 ил., 10 пр.

Изобретение относится к области экологии и охране окружающей среды, в частности к способам контроля за качеством водной среды.

Известен способ биоиндикации загрязнения морских вод тяжелыми металлами, включающий выставление стеклянных пластин на определенной глубине в исследуемой и условно-фоновой акваториях. Через две недели обрастание с пластин снимают целиком, подсушивают до постоянного веса, минерализуют концентрированной азотной кислотой и методом атомной адсорбции определяют содержание тяжелых металлов. В качестве индикатора для исследования используется пионерное сообщество обрастания стеклянных пластин (Пат. РФ №2264465, МПК C12Q 1/01, C12Q 1/1, G01N 33/18, опубл. 20.11.2005).

Недостатком данного способа является необходимость установки искусственных объектов в море на определенной глубине, что требует значительных технических и физических усилий не только по установке стеклянных пластин, но и по сохранению этих пластин в неблагоприятных морских условиях. Кроме того, использование в качестве объекта исследования пионерного сообщества обрастания не позволяет корректно оценить загрязнение именно исследуемой акватории, так как пионерное сообщество обрастания может включать в себя значительную часть организмов, попавших на пластину из другой морской акватории за счет морских течений. Данный метод не подходит для экспресс-анализа, поскольку для формирования пионерного сообщества обрастания требуется (как указывают авторы) не менее двух недель.

Известно использование в качестве индикатора загрязнения речных систем тяжелыми металлами эпифитовзвеси. Для получения эпифитовзвеси срезанные под поверхностью воды экземпляры растений помещались в полиэтиленовые пакеты, доставлялись в полевую лабораторию, высушивались на воздухе и механическим воздействием с них отделяли находящийся на них твердый материал (эпифитовзвесь); макроскопические частицы эпифитона, присутствующие в эпифитовзвеси, удаляли пластиковым пинцетом. Затем полученную эпифитовзвесь использовали для последующего анализа на тяжелые металлы (Янин Е.П. Эпифитовзвесь - новый индикатор загрязнения речных систем тяжелыми металлами. - М.: ИМГРЭ, 2002, с. 8).

К недостаткам данного способа следует отнести:

- использование в качестве индикатора эпифитовзвеси, т.е. взвеси, осажденной на макрофитах в результате выпадения осадков из водной толщи, в частности принесенных речными течениями из различных мест, что не позволяет корректно оценить загрязнение именно исследуемой акватории;

- невозможность оценки трофического уровня остатков, входящих в состав эпифитовзвеси (остатки животного происхождения или растительного, а также минеральные остатки).

Следует подчеркнуть, что в данном способе не исследуется эпифитон.

Известен способ оценки загрязненности водной среды с помощью макроводорослей для интегрированного контроля в течение суток уровня тяжелых металлов в воде. Водоросли инкубируют в морской среде в течение суток, затем извлекают, отжимают, биомассу высушивают до постоянной массы, озоляют, фильтруют, растворяют (А.С. СССР, №1677625, МПК G01N 33/18).

Недостатками этого способа являются:

- невозможность использования макроводорослей для контроля в течение более длительного времени;

- небольшой выбор определяемых элементов (свинец, цинк, кадмий) и необходимость подбора видов-мониторов для каждого конкретного региона;

- недостаточная экспрессность для проведения массовых анализов из-за большого количества и длительности операций.

Наиболее близким по количеству существенных признаков к заявляемому решению является способ оценки качества водной среды по содержанию тяжелых металлов, включающий сбор бурых макроводорослей, подготовку проб путем высушивания и растирания водорослей в яшмовой ступке, определение в гомогенизированных пробах содержания тяжелых металлов атомно-адсорбционным методом и сравнение полученных данных с данными из условно-фонового района (Коженкова С.И., Христофорова Н.К., Чернова Е.Н., Долговременный мониторинг загрязнения морских вод Северного Приморья тяжелыми металлами с помощью бурых водорослей, Экология, 2000, №3, с. 233-237).

К недостаткам известного технического решения следует отнести:

- невысокую чувствительность метода, так как концентрации тяжелых металлов в водорослях-макрофитах из прибрежных акваторий, испытывающих значительное антропогенное воздействие, и из условно-фонового района могут быть практически одинаковы;

- необходимость предварительного подбора определенного вида макроводорослей для оценки содержания конкретного тяжелого металла, поскольку в связи с физиологическими особенностями разные макроводоросли накапливают разное количество каждого конкретного металла;

- невозможность установления конкретного периода антропогенного воздействия, вследствие того, что водоросли-макрофиты имеют длительный период индивидуального развития (от нескольких месяцев до нескольких лет).

Задачей, поставленной перед изобретением, является повышение чувствительности способа и его точности.

Поставленная задача решается тем, что в известном способе оценки качества водной среды по содержанию тяжелых металлов, включающем сбор макрофитов, подготовку проб, определение в пробах содержания тяжелых металлов, сравнение полученных данных с данными из условно-фонового района, согласно изобретению, в качестве проб используют микроводоросли эпифитона.

Микроводоросли эпифитона (от гр. «epi» на + «phyton» растение) - это сообщество микроводорослей, обитающих на других растениях - макрофитах-базифитах (макроводорослях или водных цветковых растениях), которые используют только как место прикрепления, не являясь ни паразитами, ни симбионтами.

Использование в качестве биоиндикатора микроводорослей эпифитона позволяет значительно повысить не только чувствительность метода обнаружения акваторий, имеющих различную концентрацию тяжелых металлов, но и точность способа, благодаря тому, что микроводоросли эпифитона имеют короткий период индивидуального развития. Это, в частности, позволяет установить конкретный период антропогенного воздействия.

Для повышения точности способа и качества определения содержания тяжелых металлов подготовку проб осуществляют путем тщательного смыва с талломов макрофитов микроводорослей эпифитона, с последующей фильтрацией и концентрированием их биомассы.

Фильтрация смыва микроводорослей эпифитона через фильтр, с диаметром не более 100 мкм, позволяет отделить микроводоросли эпифитона от различных загрязнений: от мелких беспозвоночных, кусочков талломов макроводорослей и других примесей. Это позволяет дополнительно повысить как чувствительность, так и точность метода.

Концентрирование биомассы микроводорослей эпифитона также способствует повышению чувствительности и точности метода.

Для реализации заявленного способа пробы макрофитов, на которых обитает сообщество микроводорослей эпифитона, отбирают непосредственно на месте их естественного произрастания с глубины 0,5-3,0 метра, помещая их под водой в одинаковые сосуды из инертного материала, например из стекла. Закрытые наполненные сосуды выносят на берег. Отбор проб в исследуемом районе и в условно-фоновом районе проводят в один день.

Далее получают пробы микроводорослей эпифитона. Для этого отобранные образцы макрофитов вместе с водой сливают в емкость наподобие кюветы и делают смывы с поверхности нескольких особей макрофитов (с макроводорослей или с высших цветковых растений типа зоостеры), тщательно потирая и ополаскивая отобранные образцы.

Для выделения более чистой фракции микроводорослей эпифитона воду со смывом пропускают через капроновый фильтр с диаметром пор не более 100 мкм. Отфильтрованную пробу отстаивают, надосадочную жидкость убирают, после чего влажный осадок, представляющий из себя сконцентрированную пробу микроводорослей эпифитона, количественно переносят в фарфоровую чашку и высушивают при температуре 85°(С), а затем гомогенизируют, растирая в яшмовой ступке. Навески (0,2-0,5 г) каждой гомогенизированной пробы в трех повторностях минерализуют в концентрированной азотной кислоте (о.с.ч.) в микроволновой печи. Раствор азотной кислоты с растворенными в нем органическими веществами количественно переносят в стеклянные стаканчики и выпаривают на плите до осадка; представляющего из себя влажные соли. Полученный осадок влажных солей растворяют в 10 мл 2% азотной кислоты.

Если есть необходимость сравнения содержания тяжелых металлов в микроводорослях эпифитона и в макрофитах-базифитах, с которых получены пробы этих микроводорослей, то образцы макрофитов после смыва с них микроводорослей эпифитона легко отжимают и высушивают, раскладывая на любой поверхности из инертного материала, например на полиэтиленовой пленке, и в последующем в них также определяют содержание тяжелых металлов, используя методику, описанную в прототипе.

Определение концентрации микроэлементов выполняют на атомно-абсорбционном спектрофотометре Shimadzu 6800 (Shimadzu, Япония) с пламенным (для Fe, Zn, Cu, Ni, Cd) и электротермическим с графитовой трубкой (для Pb) атомизаторами. Ошибка при определении содержания железа, цинка, меди, никеля и кадмия составляет менее 10%, а свинца - 11%. Точность определения концентрации металла контролируют, анализируя стандартные образцы NIES-9 (Sargasso). Загрязнение реактивов контролируют, используя холостые пробы, включенные в партию подготовленных к анализу образцов.

Для наглядности способ демонстрируется следующими фигурами:

- содержание тяжелых металлов в микроводорослях эпифитона и в талломах макрофитов-базифитов Tichocarpus crinitus, Ulva fenestrata и Ptilota filicina, собранных на акватории бухты Кирпичного завода в Амурском заливе в июле 2012 г. представлено на фиг. 1А, Б, В, Г, Д, Е: где фиг. 1А - содержание свинца, фиг. 1Б - содержание меди, фиг. 1В - содержание железа, фиг. 1Г - содержание никеля, фиг. 1Д - содержание цинка и фиг. 1Е - содержание кадмия;

- содержание тяжелых металлов в талломах макроводорослей Ulva fenestrata, Tichocarpus crinitus и Ptilota filicina, собранных на акватории бухты Кирпичного завода в Амурском заливе в июле 2012 г. представлено на фиг. 2А, Б, В, Г, Д, Е: где фиг. 2А - содержание свинца, фиг. 2Б - содержание меди, фиг. 2В - содержание железа, фиг. 2Г - содержание никеля, фиг. 2Д - содержание цинка, фиг. 2Е - содержание кадмия.

Способ осуществляют следующим образом.

В июле 2012 года для определения предполагаемого загрязнения тяжелыми металлами прибрежной акватории г. Владивостока в Амурском заливе в бухте Кирпичного завода (район Нефтебазы), а также в условно-фоновом районе - в прибрежной со стороны острова Попова акватории пролива Старка, в один день были отобраны пробы доминирующих в исследуемых районах макроводорослей: Tichocarpus crinitus, Chondrus pinnulatus, Ptilota filicina и Ulva fenestrata.

Пример 1. Отобранные в бухте Кирпичного завода (район Нефтебазы) пробы макрофитов-базифитов Tichocarpus crinitus, Chondrus pinnulatus и Ulva fenestrata (всего 7 растений) переносили в кювету, в которой с поверхности талломов макроводорослей смывали микроводоросли эпифитона, тщательно потирая и ополаскивая отобранные образцы. Затем полученный смыв пропускали через капроновый фильтр с диаметром пор 80 мкм. Отфильтрованную пробу отстаивали, надосадочную жидкость убирали, после чего влажный осадок, представляющий из себя сконцентрированную пробу эпифитных микроводорослей, количественно переносили в фарфоровую чашку и высушивали при температуре 85°(С), а затем гомогенизировали, растирая в яшмовой ступке. Навески (0,2-0,5 г) каждой гомогенизированной пробы (три повторности) минерализовали в концентрированной азотной кислоте (о.с.ч.) в микроволновой печи. Раствор азотной кислоты с растворенными в нем минеральными веществами количественно переносили в стеклянные стаканчики и выпаривали на плите до осадка, представляющего из себя влажные соли. Полученный осадок влажных солей растворяли в 10 мл 2% азотной кислоты. Концентрацию тяжелых металлов проводили атомно-абсорбционным методом, как описано выше. Среднее содержание металлов представлено в таблице.

Пример 1а (по прототипу). Образцы макрофитов-базифитов Tichocarpus crinitus, Chondrus pinnulatus и Ulva fenestrata, отобранные в бухте Кирпичного завода (район Нефтебазы), после смыва с них микроводорослей эпифитона, легко отжимали и высушивали, раскладывая на поверхности полиэтиленовой пленки. После высушивания определяли содержание металлов в каждом виде макроводоросли, причем одна проба представляла смесь из водорослей Tichocarpus crinitus и Chondrus pinnulatus, а другая - водоросль Ulva fenestrata. Среднее содержание тяжелых металлов в талломах макрофитов-базифитов представлено в таблице.

Пример 2. Осуществляли аналогично примеру 1, только в качестве проб макрофитов-базифитов использовали отобранные в бухте Кирпичного завода (район Нефтебазы) талломы макроводоросли Ptilota filicina в количестве 7 штук. Фильтрацию смыва проводили на капроновом фильтре с диаметром пор 80 мкм. Среднее содержание тяжелых металлов в микроводорослях эпифитона представлено в таблице.

Пример 2а (по прототипу). Осуществляли аналогично примеру 1а, только в качестве проб брали отмытые талломы макроводоросли Ptilota filicina. Среднее содержание тяжелых металлов представлено в таблице.

Пример 3. Пробы макрофитов-базифитов Tichocarpus crinitus и Chondrus pinnulatus (всего 7 растений), отобранные в условно-фоновом районе - в прибрежной со стороны острова Попова акватории пролива Старка, переносили в кювету, в которой с поверхности талломов макроводорослей смывали микроводоросли эпифитона, тщательно потирая и ополаскивая отобранные образцы. Затем полученный смыв пропускали через капроновый фильтр с диаметром пор 80 мкм. Отфильтрованную пробу отстаивали, надосадочную жидкость убирали, после чего влажный осадок, представляющий из себя сконцентрированную пробу эпифитных микроводорослей, количественно переносили в фарфоровую чашку и высушивали при температуре 85°(С), а затем гомогенизировали, растирая в яшмовой ступке. Навески (0,2-0,5 г) каждой гомогенизированной пробы (три повторности) минерализовали в концентрированной азотной кислоте (о.с.ч.) в микроволновой печи. Раствор азотной кислоты с растворенными в нем минеральными веществами количественно переносили в стеклянные стаканчики и выпаривали на плите до осадка, представляющего из себя влажные соли. Полученный осадок влажных солей растворяли в 10 мл 2% азотной кислоты. Концентрацию тяжелых металлов проводили атомно-абсорбционным методом, как описано выше. Среднее содержание металлов в микроводорослях эпифитона представлено в таблице.

Пример 3а (по прототипу). Образцы макрофитов-базифитов Tichocarpus crinitus и Chondrus pinnulatus, отобранные в условно-фоновом районе - в прибрежной со стороны острова Попова акватории пролива Старка, после смыва с них микроводорослей эпифитона легко отжимали и высушивали, раскладывая на поверхности полиэтиленовой пленки. После высушивания в них определяли содержание металлов описанным выше способом. Среднее содержание металлов в талломах макрофитов-базифитов представлено в таблице.

В июле 2013 года с целью дальнейшего исследования возможности использования микроводорослей эпифитона в качестве биоиндикаторов загрязнения водной среды тяжелыми металлами вновь были в один день отобраны пробы в двух исследованных в предыдущий год прибрежных акваториях - в Амурском заливе в бухте Кирпичного завода (район Нефтебазы) и в условно-фоновом районе - в проливе Старка.

Пример 4. Способ осуществляли аналогично Примеру 1. В качестве пробы были взяты микроводоросли эпифитона, смытые с макроводоросли Tichocarpus crinitus (7 штук), талломы которой были отобраны в бухте Кирпичного завода (район Нефтебазы).

Среднее содержание металлов в микроводорослях эпифитона представлено в таблице.

Пример 4а (по прототипу). Способ осуществляли аналогично Примеру 1а. После высушивания талломов Tichocarpus crinitus, с которых были смыты микроводоросли эпифитона, в них определяли содержание металлов. Результаты представлены в таблице.

Пример 5. Способ осуществляли аналогично Примеру 4, только микроводоросли эпифитона была смыты с талломов макроводоросли Tichocarpus crinitus (7 штук), отобранных в условно-фоновом районе - в прибрежной со стороны острова Попова акватории пролива Старка.

Среднее содержание металлов в микроводорослях эпифитона представлено в таблице.

Пример 5а (по прототипу). Способ осуществляли аналогично Примеру 4а. После высушивания талломов Tichocarpus crinitus, с которых были смыты микроводоросли эпифитона, в них определяли содержание металлов. Талломы макрофита-базифита Tichocarpus crinitus (7 штук), были отобраны в условно-фоновом районе - в прибрежной со стороны острова Попова акватории пролива Старка. Результаты представлены в таблице.

Как видно из полученных данных, представленных в таблице, содержание тяжелых металлов в микроводорослях эпифитона значительно превышает содержание металлов в любых макроводорослях. В частности, при сравнении концентраций тяжелых металлов, полученных по примерам: Пример 1 и Пример 1а, Пример 2 и Пример 2а оказалось, что:

1) содержание Fe в микроводорослях эпифитона выше, чем в макрофитах-базифитах Tichocarpus crinitus и Chondrus pinnulatus в 96 раз, содержание Pb - в 33 раза, содержание Zn - в 2 раза, содержание Cu - в 7 раз, содержание Ni - в 6,5 раз, содержание Cd - в 4 раза (Примеры 1 и 1а, фиг. 1);

2) содержание Fe в микроводорослях эпифитона выше, чем в макрофите-базифите Ulva fenestrata в 60 раз, содержание Pb - в 64 раза, содержание Zn - в 25,5 раз, содержание Cu, Ni и Cd - в 6 раз (Примеры 1 и 1а, фиг. 1);

3) содержание Fe в микроводорослях эпифитона выше, чем в макрофите-базифите Ptilota filicina в 16 раз, содержание Pb - в 11 раз, содержание Zn - в 3 раза, содержание Cu - в 5 раз, содержание Ni и Cd - в 6 раз (Примеры 2 и 2а, фиг. 1).

Таким образом, следует сделать вывод, что заявленный способ обладает высокой чувствительностью по сравнению со способом прототипом.

Установлено также, что усредненные пробы микроводорослей эпифитона, вне зависимости, собраны ли они с нескольких разных макрофитов-базифитов или только с одного вида макрофита-базифита, показывают близкие по значению концентрации накопленных тяжелых металлов (Пример 1 и Пример 2), тогда как разные водоросли-макрофиты способны накапливать различные тяжелые металлы. В частности, среди исследованных водорослей-макрофитов в 2012 году (Примеры 1а, 2а) максимальные концентрации тяжелых металлов Pb и Cu обнаружены в талломах водоросли Ptilota filicina (Пример 2а, фиг. 2А, 2Б), максимальные концентрации Fe и Ni - в талломах Ulva fenestrata (Пример 1a, фиг. 2В, 2Г), а максимальные концентрации металлов Zn и Cd - в талломах Tichocarpus crinitus и Chondrus pinnulatus (Пример 1a, фиг. 2В, 2Г). Отсюда следует сделать вывод, что использование в качестве биоиндикаторов на содержание тяжелых металлов водорослей-макрофитов менее эффективно, чем использование микроводорослей эпифитона, так как для комплексной оценки накопления тяжелых металлов необходимо проводить анализ разных видов макроводорослей, причем некоторые из них в какой-то сезон могут отсутствовать в районе исследования. Использование микроводорослей эпифитона не предполагает анализа отдельных видов и не зависит от видовой сезонной изменчивости.

Из представленных результатов также видно, что микроводоросли эпифитона всегда содержат больше тяжелых металлов в случае их обитания на акватории, подверженной антропогенному влиянию по сравнению с микроводорослями эпифитона, обитавшими на акватории условно-фонового района. В частности, при сравнении концентраций тяжелых металлов, полученных по Примерам 4 и 5 видно, что в микроводорослях эпифитона из бухты Кирпичного завода (район Нефтебазы), на прибрежную акваторию которой оказывается значительное антропогенное воздействие, по сравнению с микроводорослями эпифитона из условно-фонового района (пролив Старка) содержание Fe и Pb выше в 3 раза, Zn - в 1,3 раза, Cu, Ni, Cd - в 2 раза. Тогда как по Примерам 4а и 5а в талломах макрофита-базифита Tichocarpus crinitus из бухты Кирпичного завода (район Нефтебазы) и из условно-фонового района (пролив Старка) концентрации тяжелых металлов Cd и Cu практически одинаковы, а в случае Fe и Pb - даже ниже (в 1,7 и в 1,3 раза соответственно). Следовательно, анализ концентраций тяжелых металлов в микроводорослях эпифитона выявил явное загрязнение акватории бухты Кирпичного завода в Амурском заливе железом, свинцом, медью, никелем кадмием и цинком, тогда как анализ концентраций тяжелых металлов в макроводорослях выявил загрязнение только цинком и никелем.

Следовательно, можно утверждать, что заявленный способ обладает большей чувствительностью и точностью по сравнению со способом прототипом и позволяет оперативно и качественно определить загрязнение водной акватории тяжелыми металлами.


СПОСОБ СРАВНИТЕЛЬНОЙ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА ВОДНОЙ СРЕДЫ ПО СОДЕРЖАНИЮ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ
СПОСОБ СРАВНИТЕЛЬНОЙ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА ВОДНОЙ СРЕДЫ ПО СОДЕРЖАНИЮ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ
СПОСОБ СРАВНИТЕЛЬНОЙ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА ВОДНОЙ СРЕДЫ ПО СОДЕРЖАНИЮ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ
СПОСОБ СРАВНИТЕЛЬНОЙ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА ВОДНОЙ СРЕДЫ ПО СОДЕРЖАНИЮ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ
СПОСОБ СРАВНИТЕЛЬНОЙ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА ВОДНОЙ СРЕДЫ ПО СОДЕРЖАНИЮ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ
СПОСОБ СРАВНИТЕЛЬНОЙ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА ВОДНОЙ СРЕДЫ ПО СОДЕРЖАНИЮ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ
Источник поступления информации: Роспатент

Showing 1-5 of 5 items.
27.02.2013
№216.012.29bc

Способ получения алкил-глицериновых эфиров из морских жиров

Изобретение относится к фармацевтической и пищевой промышленности, а именно к способу получения алкил-глицериновых эфиров из морских жиров. Способ получения алкил-глицериновых эфиров из морских жиров, включающий гидролиз морского жира, подкисление жировой смеси, промывку ее водой, первую...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002476211
Дата охранного документа: 27.02.2013
27.10.2013
№216.012.77c0

Способ криосохранения морских микроводорослей

Изобретение относится к области криобиологии, клеточной биологии, морской биотехнологии и гидробиологии. Проводят обработку клеток морских микроводорослей криопротекторной смесью, содержащей проникающий и непроникающий криопротекторы и питательную среду. Осуществляют замораживание с последующим...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002496318
Дата охранного документа: 27.10.2013
27.12.2013
№216.012.90ef

Стимулятор роста yersinia pseudotuberculosis

Изобретение относится к области микробиологии, а именно к применению экзометаболитов морской микроводоросли Phaeodactylum tricornutum. Экзометаболиты, выделенные из морской микроводоросли Phaeodactylum tricornutum путем экстракции этилацетатом культуральной жидкости, получаемой в процессе...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002502796
Дата охранного документа: 27.12.2013
27.12.2014
№216.013.16c4

Способ получения докозагексаеновой кислоты

Изобретение относится к фармацевтической промышленности, а именно к способу получения докозагексаеновой кислоты. Способ получения докозагексаеновой кислоты включает щелочной гидролиз морских жиров, обработку солей жирных кислот раствором йода, экстракцию йод-лактонов жирных кислот неполярным...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002537252
Дата охранного документа: 27.12.2014
20.09.2015
№216.013.7c06

Способ культивирования стволовых клеток, препятствующий их спонтанной дифференцировке (варианты)

Изобретения относятся к области клеточной биологии, фармакологии и медицины. Описан способ культивирования стволовых клеток, исключающий их спонтанную дифференцировку. Способ включает приготовление раствора пектина с концентрацией до 5% и степенью этерификации не более 50%; нанесение его на...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002563347
Дата охранного документа: 20.09.2015
Showing 1-5 of 5 items.
27.02.2013
№216.012.29bc

Способ получения алкил-глицериновых эфиров из морских жиров

Изобретение относится к фармацевтической и пищевой промышленности, а именно к способу получения алкил-глицериновых эфиров из морских жиров. Способ получения алкил-глицериновых эфиров из морских жиров, включающий гидролиз морского жира, подкисление жировой смеси, промывку ее водой, первую...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002476211
Дата охранного документа: 27.02.2013
27.10.2013
№216.012.77c0

Способ криосохранения морских микроводорослей

Изобретение относится к области криобиологии, клеточной биологии, морской биотехнологии и гидробиологии. Проводят обработку клеток морских микроводорослей криопротекторной смесью, содержащей проникающий и непроникающий криопротекторы и питательную среду. Осуществляют замораживание с последующим...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002496318
Дата охранного документа: 27.10.2013
27.12.2013
№216.012.90ef

Стимулятор роста yersinia pseudotuberculosis

Изобретение относится к области микробиологии, а именно к применению экзометаболитов морской микроводоросли Phaeodactylum tricornutum. Экзометаболиты, выделенные из морской микроводоросли Phaeodactylum tricornutum путем экстракции этилацетатом культуральной жидкости, получаемой в процессе...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002502796
Дата охранного документа: 27.12.2013
27.12.2014
№216.013.16c4

Способ получения докозагексаеновой кислоты

Изобретение относится к фармацевтической промышленности, а именно к способу получения докозагексаеновой кислоты. Способ получения докозагексаеновой кислоты включает щелочной гидролиз морских жиров, обработку солей жирных кислот раствором йода, экстракцию йод-лактонов жирных кислот неполярным...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002537252
Дата охранного документа: 27.12.2014
20.09.2015
№216.013.7c06

Способ культивирования стволовых клеток, препятствующий их спонтанной дифференцировке (варианты)

Изобретения относятся к области клеточной биологии, фармакологии и медицины. Описан способ культивирования стволовых клеток, исключающий их спонтанную дифференцировку. Способ включает приготовление раствора пектина с концентрацией до 5% и степенью этерификации не более 50%; нанесение его на...
Тип: Изобретение
Номер охранного документа: 0002563347
Дата охранного документа: 20.09.2015
+ добавить свой РИД