СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ (5Z,9Z)-5,9-ЭЙКОЗАДИЕНОВОЙ КИСЛОТЫ, ПРОЯВЛЯЮЩЕЙ ИНГИБИРУЮЩЕЕ ДЕЙСТВИЕ НА ЧЕЛОВЕЧЕСКУЮ ТОПОИЗОМЕРАЗУ I

Предлагаемое изобретение относится к области органической химии, конкретно к области получения (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислоты формулы (1), проявляющей ингибирующее действие на человеческую топоизомеразу I:

(5Z,9Z)-5,9-Эйкозадиеновая кислота формулы (1) перспективна в качестве лекарственного препарата, обладающего противоопухолевым, противовирусным и антибактериальным действием [N.M. Carballeira, New advances in fatty acids as antimalarial, antimycobacterial and antifungal agents, // Prog Lipid Res, 47, (2008), 50-61; D'Arpa, P., Machlin, P.S., Ratrie, H., III, Rothfield, N.F., Cleveland, D.W., Eamshaw, W.C. cDNA cloning of human DNA topoisomerase I: catalytic activity of a 67.7-kDa carboxyl-terminal fragment. // Proc. Nat. Acad. Sci., 85, (1988), 2543-2547].

Известен [N.M. Carballeira, A. Emiliano, A. Guzman. Facile syntheses for (5Z,9Z)-5,9-hexadecadienoic acid, (5Z,9Z)-5,9-nonadecadienoic acid, and (5Z,9Z)-5,9-eicosadienoic acid through a common synthetic route. // Chem. Phys. Lipids, 100, (1999), 33-40.] четырех стадийный способ синтеза (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислоты формулы (1) и (5Е,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислоты формулы (3) в соотношении, равном 9:1, исходя из 2-(2-бромоэтил)-1,3-диоксолана (2) с выходом 9-12% по схеме:

Предлагаемый способ не позволяет получать индивидуальную (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновую кислоту формулы (1).

К существенным недостаткам описанного выше метода следует отнести следующие:

- многостадийность;

- необходимость использования дорогостоящих исходных реагентов;

- низкие выходы конечных диеновых кислот;

- невозможность синтеза индивидуальной (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислоты. В каждом опыте образуются смеси цис- и транс-изомеров.

- нетехнологичность синтеза и методов выделения диеновых кислот.

Предлагается новый способ стереоселективного синтеза (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислоты формулы (1) исходя из тетрагидропиранового эфира 5,6-гептадиен-1-ола (4) и 1,2-тридекадиена (5), свободный от указанных выше недостатков.

Сущность способа заключается во взаимодействии тетрагидропиранового эфира 5,6-гептадиен-1-ола (4) и 1,2-тридекадиена (5) с реактивом Гриньяра RMgX (R=Me, Et, Pr, Bu, Oct; X=Cl, Br, I) в присутствии металлического Mg (порошок) и катализатора титаноцендихлорида Cp₂TiCl₂, взятых в мольном соотношении (4):(5):RMgX:Mg:Cp₂TiCl₂=10:12:(30-50):32:(0.4-0.6), предпочтительно 10:12:40:32:0.5. Реакцию проводят в атмосфере аргона при температуре 0-35°C, предпочтительно 20°C, и атмосферном давлении. Время реакции 6-10 часов, предпочтительно 8 часов. В качестве растворителя необходимо использовать диэтиловый эфир. После обработки реакционной массы 5% водным раствором HCl получают 2-[(5Z,9Z)-5,9-эйкозадиен-1-илокси]тетрагидро-2Н-пиран формулы (6). Полученный 2-[(5Z,9Z)-5,9-эйкозадиен-1-илокси]тетрагидро-2Н-пиран формулы (6) окисляют реагентом Джонса с получением целевой (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислоты формулы (1) с выходом 48-66 % на исходный пиран (6). Реакция проходит по схеме:

Проведение реакции в присутствии катализатора Cp₂TiCl₂ больше 6 мол.% по отношению к O-содержащему 1,2-диену формулы (4) не приводит к существенному увеличению выхода целевых продуктов (1). Использование в реакции катализатора Cp₂ZrCl₂ менее 4 мол.% снижает выход 2-[(5Z,9Z)-5,9-эйкозадиен-1-илокси]тетрагидро-2Н-пирана (6), что связано с уменьшением каталитически активных центров в реакционной массе. Опыты проводили при температуре 20°C. При более высокой температуре (например, 35°C) увеличиваются энергозатраты и содержание продуктов уплотнения, при меньшей температуре (например, 0°C) снижается скорость реакции.

Изменение соотношения исходных реагентов в сторону увеличения содержания RMgX (R= алкил, Х=Cl, Br, I) по отношению к кислородсодержащему 1,2-диену (4) не приводит к значительному повышению выхода целевых продуктов (1). Снижение количества RMgX приводит к уменьшению выхода 2-[(5Z,9Z)-5,9-эйкозадиен-1-илокси]тетрагидро-2Н-пирана (6), что приводит к уменьшению выхода целевой (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислоты (1).

Существенные отличия предлагаемого способа.

Предлагаемый способ базируется на использовании в качестве исходных реагентов тетрагидропиранового эфира 5,6-гептадиен-1-ола (4) и 1,2-тридекадиена (5), доступных реактивов Гриньяра общей формулы RMgX (R= алкил, Х=Cl, Br, I) и реактива Джонса, а также катализатора титаноцендихлорид (Cp₂TiCl₂). В известном способе смесь стереоизомерных (5Z,9Z)- и (5Е,9Z)-5,9-эйкозадиеновых кислот получают из 2-(2-бромоэтил)-1,3-диоксолана с применением на двух стадиях крайне пирофорного н-бутиллития. Реакция проводится в четыре стадии, общий выход стереоизомерных кислот составляет (9-12%).

Предлагаемый способ обладает следующими преимуществами:

1. Способ позволяет получать с высокой стереоселективностью индивидуальную (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновую кислоту (1) в две препаративные стадии с высоким выходом.

A) доступность исходных реагентов;

Б) технологичность осуществления реакции на всех стадиях;

B) высокие выходы (5Z,9Z)-диеновых кислот;

Г) исключительная стереоселективность разработанного метода.

2. Полученная стереоселективно высокочистая (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновая кислота обладает выраженным ингибирующим действием на топоизомеразу I - один из ключевых ферментов клеточного цикла.

Одним из важнейших ферментов, принимающих участие в клеточном цикле, является ДНК-зависимый фермент топоизомераза, катализирующий топологические перестройки ДНК и играющий одну из ведущих ролей во всех аспектах функционирования генома. Внесение топоизомеразами одно- (топоизомераза I или топо I) и двухцепочечных (топоизомераза II или топо II) разрывов, с последующей их сшивкой и восстановлением целостности молекулы ДНК, обуславливает мобильность, необходимую для конформационных изменений ДНК в процессах матричного синтеза и подвижности хромосом в митозе. Топоизомеразы рассматриваются в качестве внутриклеточных мишеней действия химиотерапевтических препаратов, так как, препятствуя репарации разрывов, такие вещества способны вызывать накопление поврежденных молекул ДНК, форсируя, таким образом, гибель клетки.

В настоящее время ведется интенсивный поиск и отбор природных ингибиторов топоизомеразы I, а также создание новых синтетических аналогов и полусинтетических производных известных противоопухолевых соединений, способных изменять каталитическую активность ферментов, стабилизируя ковалентные ДНК-белковые комплексы.

Для решения и реализации указанных выше задач большим потенциалом обладают производные алифатических жирных кислот, содержащие цис-двойные углерод-углеродные связи в 5- и 9-м положениях углеродной цепи [Nemoto et al., Amphimic acids and related long-chain fatty acids as DNA topoisomerase I inhibitors from an Australian sponge, Amphimedon sp.: Isolation, structure, synthesis, and biological evaluation // Tetrahedron, 53, (1997), 16699-16710; Makarieva et al., A new cytotoxic fatty acid (5Z,9Z)-22-methyl-5,9-tetracosadienoic acid and the sterols from the far eastern Sponge Geodinella robusta. // Lipids, 37, (2002), 75-80]. В настоящее время общепринятым экспресс-тестом, позволяющим определить ингибирующее влияние соединения на человеческую топоизомеразу I, является набор, производимый фирмой Topogene (USA) [Carballeira, N.М., et al. Total synthesis and biological evaluation of (5Z,9Z)-5,9-hexadecadienoic acid, an inhibitor of human topoisomerase I // J. Nat. Prod, 65, (2002), 1715-1718].

Обнаружено, что (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновая кислота (1) полностью ингибирует топоизомеразу I при концентрации 0,1 µM.

Концентрационная зависимость ингибирования реакции релаксации ДНК in vitro под действием топоизомеразы I в стандартных условиях изображена на рисунке 1. Полное ингибирование определяется отсутствием топоизомеров в образце при электрофоретическом разделении на агарозном геле.

Проведение реакции релаксации суперскрученной ДНК под действием топоизомеразы I осуществляли следующим образом: реакционную смесь (20 мкл), содержащую 0,25 мкг ДНК плазмиды pHOT (TopoGen, USA), 1 ед. акт. рекомбинантной топоизомеразы I (TopoGen, USA), и исследуемое вещество -(5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновую кислоту - инкубировали в буфере (35 мМ Трис-HCl, pH 8.0; 72 мМ KCl, 5 мМ MgCl, 5 мМ дитиотрейтола, 5 мМ спермидина, 0,01% бычьего сывороточного альбумина) в течение 30 мин при 37°C в термостате Biosan (Латвия). Исследуемое вещество было внесено в реакционную смесь перед добавлением фермента топоизомеразы I. Для контроля ингибирующего действия на топоизомеразу I применяли алкалоид камптотецин (TopoGEN, США) в концентрации 10 мкМ. Реакцию останавливали внесением додецилсульфата натрия до конечной концентрации 1%. После добавления раствора (5 мг/мл) протеиназы К (Sigma Chemical Co., США) (1:10) реакционную смесь инкубировали 40 мин при 37°C. В анализируемые пробы добавляли 0,1% раствор бромфенолового синего (1:10) и подвергали электрофорезу в отсутствие бромистого этидия. Продукты реакции разделяли в 1% агарозном геле (3 В/см) в трисацетатном буфере в течение 4-6 час. Состав трисацетатного буфера: 40 мМ Трис-основания (Sigma Chemical Co., США), 1 мМ ЭДТА (Sigma Chemical Co., США), 30 мМ ледяной уксусной кислоты (Хеликон, Россия). После электрофореза гели обрабатывали раствором бромистого этидия (0,5 мкг/мл). Визуализацию гелей проводили в УФ-свете на гель-документирующей системе Infinity VX2 1120/Blue X-Press, (Vilber Lourmat, Франция).

Результаты, приведенные на рисунке 1, свидетельствуют о том, что в реакции релаксации суперскрученной плазмидной ДНК с ингибированием активности топоизомеразы I (Topogen, USA), вносимой (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислотой (в данном примере 1 единица фермента ингибируется 0,1 мкМ исследуемого синтезированного вещества) уменьшается остаточное количество суперскрученной формы плазмидной ДНК и растет число образованных топоизомеров (дорожка 9). Следовательно, правомерно и обратное утверждение, что ослабление активности топоизомеразы I ведет к уменьшению числа топоизомеров, накоплению открытой кольцевой формы плазмиды и наличию остаточных количеств суперскрученной формы ДНК (дорожки 5-8).

Способ поясняется следующими примерами:

ПРИМЕР 1. В стеклянный реактор в атмосфере сухого аргона (0°C) при перемешивании загружали 1.82 г (10 ммоль) тетрагидропиранового эфира 5,6-гептадиен-1-ола формулы (4), 2.16 г (12 ммоль) 1,2-тридекадиена (5), 20 мл (40 ммоль) EtMgBr (2M раствор в Et₂O), 0.77 г (32 ммоль) Mg (порошок) и 0.124 г (0.5 ммоль) Cp₂TiCl₂. Температуру реакционной смеси повышали до 20-22°C, перемешивали 8 ч. Реакционную массу обрабатывали 5% раствором HCl в Н₂О. Продукты реакции экстрагировали эфиром, экстракты сушили над MgSO₄, растворитель упаривали, остаток хроматографировали на колонке (SiO₂, элюент - петролейный эфир - EtOAc (50:1)). Получали индивидуальный 2-[(5Z,9Z)-5,9-эйкозадиен-1-илокси]тетрагидро-2Н-пиран формулы (6). Полученный 2-[(5Z,9Z)-5,9-эйкозадиен-1-илокси]тетрагидро-2Н-пиран формулы (6) окисляют реагентом Джонса (CrO₃-H₂SO₄) с получением целевой (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислоты формулы (1) с выходом 64% на исходный пиран (6).

Спектральные характеристики (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислоты (1):

Спектр ЯМР ¹Н, δ, м.д.: 0.90 (т, 3Н, СН₃, J=7.2 Гц), 1.28-1.32 (м, 16Н, СН₂), 1.72 (кв, 2Н, СН₂, J=7.2 Гц), 2.01-2.15 (м, 8Н, СН₂СН=), 2.38 (т, 2Н, CH₂-COOH, J=7.6 Гц), 5.35-5.46 (м, 4Н, СН=СН);

Спектр ЯМР ¹³С, δ, м.д.: 14.23 С(20), 22.69 С(19), 24.58 С(3), 26.49 С(11), 27.27 С(7,8), 27.40 С(4), 29.33 С(17), 29.36 С(16), 29.57 С(13), 29.66 С(15), 29.74 С(14), 31.92 С(18), 33.45 С(2), 128.60 С(10), 128.91 С(9), 130.55 С(6), 130.61 С(5), 180.09 С(1).

Другие примеры, подтверждающие способ, приведены в таблице 1.

Рис.1. Электрофореграмма продуктов релаксации суперскрученной плазмидной ДНК in vitro под действием топоизомеразы I (набор Topoisomerase I Drug Screening Kit TG-1018-2, Topogen, USA) в присутствии (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислоты (вещество внесено перед добавлением фермента топоизомеразы I). 1. Суперскрученная плазмидная ДНК (pHOT1). 2. Релаксированная форма ДНК (визуализация набора топоизомеров). 3. Отрицательный контроль с ДМСО (в концентрации 3%). 4. Реакция релаксации плазмидной ДНК в присутствии камптотецина (10 мкМ). 5-9. Результат влияния различных концентраций (5Z,9Z)-5,9-эйкозадиеновой кислоты на реакцию релаксации плазмидной ДНК (5 дорожка - 0,75 мкМ, 6 дорожка - 0,5 мкМ, 7 дорожка - 0,25 мкМ, 8 дорожка - 0,1 мкМ, 9 дорожка - 0,01 мкМ). Окраска бромистым этидием проводилась после проведения электрофореза.