Результат интеллектуальной деятельности: ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ РНК ВИРУСА БЛЮТАНГА МЕТОДОМ ОТ-ПЦР В РЕЖИМЕ РЕАЛЬНОГО ВРЕМЕНИ

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к генетической инженерии, и может быть использовано в ветеринарной вирусологии для генодиагностики, а именно для обнаружения РНК вируса блютанга.

Вирус блютанга (ВБ), вызывающий заболевание у домашних и диких жвачных животных, является одним из видов рода Orbivirus, семейства Reoviridae [1]. Геном вируса состоит из 10-ти сегментов дцРНК, упакованных в икосаэдрический нуклеокапсид, состоящий из семи структурных белков [2]. Десять линейных дцРНК сегментов генома ВБ варьируют по размеру от 3944 п.о. до 822 п.о. (пример для ВБ 8 серотипа) [3]. Они обозначены как сегменты 1-10, в соответствии с уменьшением молекулярной массы. Геном ВБ кодирует 10 белков вируса, каждый белок - одним из сегментов дцРНК [4]. Семь белков (VP1-VP7) являются структурными компонентами вирусной частицы, остальные три (NS1,NS2 и NS3) являются неструктурными белками, которые синтезируются во время репликации вируса в инфицированных клетках. Наименьший из неструктурных белков, NS3, кодируемый 10 сегментом, является четвертым наиболее вариабельным из белков ВБ [3], анализ которого позволил разделить изоляты вируса на несколько кладов [3], однако он считается умеренно консервативным относительно других сегментов. Например, NS3 белок вируса АЧЛ имеет чрезвычайно высокий уровень вариаций, что позволило сгруппировать последовательности 10 сегмента в 3 кластера - альфа, бета и гамма [5]. Вне Африки вспышек АЧЛ было относительно немного и поэтому отсутствие любого географического группирования вирусов по 10 сегменту отражает ограничение вируса Африканским континентом. NS3 участвует в процессе освобождения частиц ВБ из инфицированной клетки хозяина [6].

В настоящее время известно о существовании 26-ти генотипов вируса, 25 из которых в антигенном отношении соответствуют 1-24 и 26 серотипам вируса. Данные молекулярной эпидемиологии свидетельствуют о высокой генетической гетерогенности его популяции, которая позволяет разделить вирусы на типы, топотипы, квазитипы. На настоящий момент известно более 300-т вариантов вируса, генетически отличающихся друг от друга.

Существует необходимость совершенствования средств и методов лабораторной диагностики, постановки диагноза при бессимптомном течении болезни и появлении новых генетических вариантов вируса, а именно разработка серогруппспецифической тест-системы для обнаружения РНК вируса блютанга методом ОТ-ПЦР в режиме реального времени, позволяющей в короткие сроки установить наличие генома возбудителя в образцах биологического материала от инфицированных животных. Трудности в ее разработке обусловлены несколькими факторами: во-первых, это структура генома, так как он представлен 10-ю сегментами дцРНК, и как результат - это известный на данный момент факт частой реассортации вирусов как полевых вариантов, так и полевых с вакцинными, не только внутри одного серотипа, но и между серотипами.

Известен количественный метод ОТ-ПЦР в режиме реального времени для обнаружения вакцинных и/или полевых штаммов ВБ. С того момента, как обнаружение ПЦР-продуктов стало основано на флюоресцентной интенсивности, это значительно увеличило производительность теста и снизило риск контаминации. Были разработаны два универсальных теста, основанных на ОТ-ПЦР в режиме реального времени, они позволили обнаруживать все серотипы ВБ [7, 8, 9]. Все тест-системы были разработаны за рубежом и на период, когда было известно о существовании только 24 серотипов вируса. Существенным недостатком служит их дороговизна и длительный срок поставки в РФ, а также валидация только с использованием 24 серотипов, что может привести к ложноотрицательным результатам при исследовании материала, содержащего вирус блютанга новых генетических вариантов, или к снижению специфичности наборов.

Целью настоящего изобретения является создание серогруппспецифической тест-системы для РНК обнаружения вируса блютанга в пробах биологического материала, основанной на амплификации 10-го сегмента генома вируса блютанга.

Поставленная цель достигается тем, что предлагаемая тест-система для обнаружения генома вируса блютанга путем проведения полимеразной цепной реакции в реальном времени включает синтетические олигонуклеотидные праймеры и ДНК-зонд, комплементарные участкам консервативного 10-го сегмента, имеющие следующий нуклеотидный состав (5' - 3'):

BTV/10/qf - ACKggTgCWACgCAAACACA

BTV/10/z - FAM - AARgCTgCATTCgCATCgTACGC - BHQ1

BTV/10/qr - ACRTCATCACgAAACgCTTC

Технический результат заключается в повышении эффективности обнаружения РНК вируса блютанга в образцах различных видов биологического материала, возможность определения серотипа вируса блютанга с помощью ПЦР с этапом обратной транскрипции в режиме реального времени, а также повышение специфичности и чувствительности, сокращение времени проведения работы по определению серотипа вируса блютанга в образцах исследуемого биологического материала.

Сущность изобретения состоит в том, что при помощи указанных серогруппспецифических олигонуклеотидных праймеров и ДНК-зонда проводят ОТ-ПЦР в режиме реального времени, позволяющую выявить РНК вируса блютанга 25 серотипов (1-24, 26). Данная система позволяет повысить специфичность и чувствительность реакции.

В основе используемого способа - ПЦР в режиме реального времени, технология гибридизационных зондов TaqMan, контролирующая кинетику ПЦР непосредственно в ходе амплификации с использованием резонансного тушения флуоресценции. Для детекции использовали зонд, несущий флуорофор и тушитель, комплементарный части амплифицируемого со специфическими праймерами фрагмент.

Таблица 1

Серогруппспецифические праймеры и ДНК-зонд для обнаружения РНК вируса блютанга

Выбор и анализ серогруппспецифических праймеров и зондов (табл. 1) проводили при помощи пакета прикладных программ «Bio Edit http://www.mbio.ncsu.edu/bioedit/BioEdit_708_062707.zip», «Oligo 6.0» на основании анализа нуклеотидных последовательностей 10-го сегмента референтных штаммов и изолятов 26 (1-26) серотипов вируса, опубликованных в GenBank. В качестве источника флуоресценции на 5' конце зонда применяли краситель FAM, а для тушения флуоресценции на 3' конце BHQ1.

Пример конкретного выполнения

Обнаружение генома вируса блютанга в образцах биологического материала (кровь от инфицированных блютангом животных, культуральный материал вируса, лиофилизированный культуральный материал вируса из музея штаммов микроорганизмов ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии, а также в образцах интактных культур клеток, кровь от интактных животных и культуральный материал гетерологичных вирусов).

Из представленных образцов с использованием реагента Тризол (Invitrogen) и согласно инструкции производителя были выделены нуклеиновые кислоты. Далее препараты нуклеиновых кислот использовали в реакции: 8 мкл образца добавляли к реакционной смеси для денатурации. В пробирку с денатурированной РНК добавляли смесь для реакции обратной транскрипции. Препараты полученных комплементарных ДНК в количестве 10 мкл использовали для постановки собственно ПЦР в режиме реального времени (результаты представлены в таблице 2).

Проведение реакции обратной транскрипции

В подготовленные пробирки вносят по 7 мкл смеси для денатурации, сверху наслаивают 40 мкл минерального масла. Под масло вносят 8 мкл препарата РНК. Реакцию денатурации проводят при температуре 95°С в течение 5 минут. Далее необходимо заморозить смесь после денатурации, поместив пробирки в штатив с хладагентом.

Готовят смесь для обратной транскрипции, для этого на одну пробу в отдельной пробирке смешивают 9,5 мкл смеси для обратной транскрипции и 0,2 мкл (40 ед) MMLV-ревертазы, смесь перемешивают. В пробирки после денатурации вносят по 9,7 мкл смеси для обратной транскрипции. Обратную транскрипцию проводят при температуре 42°С в течение 30-ти минут. После окончания реакции препарат кДНК используют для постановки ПЦР.

Проведение ПЦР в режиме реального времени

В отдельной пробирке готовят общую реакционную смесь на необходимое количество образцов, для этого на одну пробу добавляют 8 мкл смеси для ПЦР, 7 мкл смеси праймеров и 0,2 мкл (1 ед) Taq-полимеразы. Смесь перемешивают, избегая образования пены, и раскапывают по 15 мкл в пробирки объемом 0,2 см³, на поверхность смеси вносят воск в объеме 15 мкл.

В подготовленные для ПЦР пробирки на воск вносят по 10 мкл кДНК.

Профиль реакции:

1. Удержание температуры 95°C - 3 мин

2. Циклирование

95°C - 10 c

60°С - 20 с

72°С - 15 с

Цикл повторить 5 раз.

3. Циклирование с детекцией 2

95° C - 10 c

60° С - 20 с - Детекция

72° С - 15 с

Цикл повторить - 40 раз.

Флуоресценцию измеряют по каналу Green при температуре 60°С.

Учет и интерпретация результатов амплификации

Результаты интерпретируют на основании наличия/отсутствия пересечения кривой флуоресценции с установленной на уровне пороговой линией (Threshold), что соответствует наличию/отсутствию значения C_t в соответствующей графе в таблице результатов.

Таблица 2

Результаты обнаружения РНК вируса блютанга методом ОТ-ПЦР в режиме реального времени с использованием серогруппспецифической тест-системы

Таким образом, разработана тест-система, позволяющая с помощью метода ОТ-ПЦР в режиме реального времени обнаруживать РНК вируса блютанга 25 серотипов (1-24, 26).

Основными преимуществами заявляемого изобретения являются:

- высокая специфичность и чувствительность тест-системы для обнаружения РНК вируса блютанга, благодаря избирательному выявлению уникальной нуклеотидной последовательности 10-го сегмента генома вируса;

- быстрота проведения анализа, благодаря исключению ряда процедур, необходимых для регистрации продуктов амплификации в классической ПЦР;

- простота выполнения методики, исключающая необходимость привлечения высококвалифицированного персонала;

- относительная дешевизна метода, благодаря использованию ОТ-ПЦР в режиме реального времени для идентификации генома возбудителя.

Источники информации

1. The dsRNA viruses/ P.P.C. Mertens// Virus Res. - 2004. -Vol.101. - P.3-13.

2. Bluetongue virus assembly and morphogenesis/ P. Roy, R. Noad// Curr Top Microbiol Immunol. - 2006. - Vol.309. - P.87-116.

3. Sequence analysis of bluetongue virus serotype 8 from the Netherlands 2006 and comparison to other European strains/ S. Maan, N. S. Maan, N. Ross-smith, C. A. Batten, A. E. Shaw, S. J. Anthony, A. R. Samuel, K. E. Darpel, E. Veronesi, C. A. L. Oura, K. P. Singh, K. Nomikou, A. C. Potgieter, H. Attoui, E. van Rooij, P. van Rijn, K. D. Clercq, F. Vandenbussche, S. Zientara, E. Bre´ard, C. Sailleau, M. Beer, B. Hoffman, P.S. Mellor and P. P. C. Mertens// Virology. - 2008. - Vol. 377. - P.308-18.

5. Mertens, P.P.C. Assignment of the genome segments of bluetongue virus type 1 to the proteins which they encode/ P.P.C. Mertens, F. Brown and D.V. Sangar// Virology. - 1984. - Vol.135. - P.207-17.

6. Sailleau, C. Nucleotide sequence comparison of the segments S10 of the nine African horsesickness virus serotypes/ C. Sailleau, S. Moulay and S. Zientara// Arch. Virol. - 1997. - Vol.142. - P.965-78.

7. Hyatt, A.D. Release of bluetongue virus-like particles from insect cells is mediated by BTV nonstructural protein NS3/NS3a/ A.D. Hyatt, Y. Zhaoand, P. Roy// Virology. - 1993. - Vol.193. - P.592-603.

8. Development and initial evaluation of a real-time RT-PCR assay to detect bluetongue virus genome segment 1/ A.E. Shaw, P. Monaghan, H.O. Alpar, S. Anthony, K.E. Darpel, C.A. Batten, A. Guercio, G. Alimena, M. Vitale, K. Bankowska, S. Carpenter, H. Jones, C.A.L. Oura, D.P. King, H. Elliott, P.S. Mellor, P.P.C. Mertens// http://www.sciencedirect.com/science/journal/01660934. - 2007. -http://www.sciencedirect.com/science?_ob=PublicationURL&_hubEid=1-s2.0-S0166093407X03136&_cid=271147&_pubType=JL&view=c&_auth=y&_acct=C000228598&_version=1&_urlVersion=0&_userid=10&md5=3ce2e4caaf5a1dbc305c242f8e5a2345 P.115-126.

9. Bluetongue virus detection by two real-time RT-qPCRs targeting two different genomic segments/ J.F. Toussaint, C. Sailleau, E. Breard, S. Zientara, K. De Clercq// Journal of Virological Methods. - 2007. - Vol.140. - P.115-123.

10. Rapid detection and quantitation of Bluetongue virus (BTV) using a Molecular Beacon fluorescent probe assay/ G. Orr`u , M. L. Ferrando, M. Meloni, M. Liciardi, G. Savini, P. De Santis// Journal of Virological Methods. - 2006. - Vol.137. - P.34-42.