СПОСОБ ПРОГНОЗИРОВАНИЯ ИСХОДА РАСПРОСТРАНЕННОГО ГНОЙНОГО ПЕРИТОНИТА

Изобретение относится к медицине, а именно к анестезиологии и реаниматологии и может быть использовано для определения исхода распространенного гнойного перитонита (РГП).

Известен способ прогнозирования неблагоприятного исхода распространенного перитонита, заключающейся в исследовании у больных содержания лактоферрина в перитонеальном экссудате в первые сутки послеоперационного периода и при значении показателя менее 2500 нг/мл прогнозируют неблагоприятный исход [2]. Недостатком способа является необходимость исследования перитонеального экссудата в первые сутки после операции, что задерживает начало мероприятий, направленных на обеспечение благоприятного исхода заболевания.

Известен способ прогнозирования исхода комплексного лечения больных РГП при абдоминальном введении имозимазы с определением показателей уровня плазминогена, продуктов деградации фибриногена и фибрина, а также показателей агрегации и дезагрегации тромбоцитов при поступлении и в процессе лечения больного [3]. Недостатком способа является длительность проведения исследований для формирования прогноза исхода заболевания.

Наиболее близким к предлагаемому является способ прогнозирования исхода заболевания больных РГП с определением на 2 сутки заболевания концентрации общего холестерина (ОХс), холестерина липопротеидов высокой плотности (Хс-ЛПВП), величины лейкоинтоксикационного индекса (ЛИИ), индекса сдвига лейкоцитов (ИСЛ) и при концентрации ОХс ниже 2,5 ммоль/л, Хс-ЛПВП ниже 0,9, значении ЛИИ выше 4,0 и ИСЛ выше 6,0 прогнозируют неблагоприятный исход лечения [4]. Недостатком способа является необходимость определения заявляемых показателей только на 2 сутки заболевания, что задерживает начало мероприятий, направленных на обеспечение благоприятного исхода РГП.

Задачей предлагаемого способа является раннее прогнозирование (в 1 сутки после установки диагноза) исхода РГП.

Поставленную задачу осуществляют за счет того, что с помощью биолюминесцентного метода определяют активности ЛДГ, МДГ, НАДФГДГ и ГР в лимфоцитах периферической крови больных РГП в 1 сутки после постановки диагноза. Затем рассчитывают метаболический коэффициент (МК), представляющий собой соотношение произведений активности ГР и НАДФГДГ к произведению активностей ЛДГ и МДГ, то есть

МК=(ГР×НАДФГДГ)/(ЛДГ×МДГ).

При значении МК ниже 0,005 прогнозируют неблагоприятный исход заболевания, при МК равном или выше 0,005 прогнозируют благоприятный исход РГП.

Значение 0,005 получено опытным путем на основании сопоставления значений рассчитываемого МК и данных последующего наблюдения за клиническим состоянием больных РГП. Значение МК ниже 0,005 свидетельствует о снижении активности ферментативных реакций, окисляющих НАДФН, которые реализуют антиоксидантные функции и осуществляют перенос интермедиатов с энергетических процессов на реакции аминокислотного обмена.

Способ осуществляют следующим образом. У больных в первые сутки после постановки диагноза РГП забирают венозную кровь из локтевой вены свободным током в пробирки с гепарином. Выделяют лимфоциты. Центрифугируют в градиенте плотности фиколл-верографина по стандартной методике A. Boyum (1968) [7]. Подсчитывают количество лимфоцитов, например, в камере Горяева. При контроле морфологического состава лейкоцитарных взвесей определяют чистоту выхода лимфоцитов, которая составляет не менее 97%. 1 млн. выделенных клеток используют для определения активности ЛДГ, МДГ, НАДФГДГ и ГР лимфоцитов одним из известных способов, например, биолюминесцентным [5, 6]. Для этого суспензию выделенных лимфоцитов, содержащую клетки в концентрации 1,0 млн/мл, разрушают путем осмотического лизиса с добавлением дистиллированной воды (1:5 по объему) и 1,0-2,0 мМ дитиотреитола. Затем непосредственно определяют активность ЛДГ, МДГ, НАДФГДГ и ГР. Для этого в 150 мкл инкубационной смеси, содержащей соответствующий субстрат и кофактор, вносят 50 мкл суспензии разрушенных лимфоцитов. Конкретные значения концентраций субстратов и коферментов, а также pH среды для определяемых ферментов представлены в таблице 1.

Необходимо отметить, что в инкубационную смесь для определения активности НАДФГДГ дополнительно вносят NH₄CI в концентрации 5,0 мМ.

После инкубации исследуемых проб при 37°C в течение 30 минут для ЛДГ и МДГ и 5 минут для НАДФГДГ и ГР к 200 мкл инкубационной смеси добавляют 50 мкл флавинмононуклеотида (ФМН) в концентрации 1,5×10^-5 M, 50 мкл 0,0005% миристинового альдегида и 10 мкл ферментативной системы НАДН : ФМНоксидоредуктаза-люцифераза (все реактивы биолюминесцентной системы разводят в 0,1 М K⁺, Na⁺-фосфатном буфере с pH 7,0). После смешивания биолюминесцентных реактивов и инкубационной пробы с помощью биохемилюминометра, например марки "БЛМ-8803" измеряют свечение. Учитывая, что в клетках имеется определенное количество субстратов для течения различных метаболических реакций, в том числе и катализируемых исследуемыми ферментами, определяют показатели, условно названные - субстратный фон ферментов. Определяют в тех же условиях, что и для вышеперечисленных дегидрогеназ, но в инкубационную смесь вместо соответствующего субстрата вносят буфер. В результате измерения свечения на биолюминометре получают относительные значения активности исследуемых ферментов. Чтобы получить абсолютные значения активности строят графики зависимости интенсивности биолюминесценции от концентрации НАДН и НАДФН (калибровочный график). Для этого 200 мкл стандартного раствора НАДИ или НАДФН в диапазоне 10^-9-10^-4 М вносят в кюветы биолюминометра, содержащие ФМН, миристиновый альдегид и НАД(Ф)Н : ФМНоксидоредуктазу-люциферазу в концентрациях указанных выше, после чего производят измерение интенсивности биолюминесценции. В связи с широким диапазоном pH буферов, используемых для определения дегидрогеназной активности, а также pH-зависимостью биолюминесценции ферментативной системы из светящихся бактерий, калибровочные графики строят для каждого pH буфера. Активность ферментов рассчитывают по формуле:

А=Δ[С]×V/Т

где:

А - активность фермента, Е на 1×10⁴ лимфоцитов (1Е=1 мкмоль/мин [1]);

Δ[C] - разница концентраций НАДН или НАДФН в пробах "фермент" и "фон фермента", мкмоль;

V - объем пробы, мл;

T - время инкубации, мин.

Затем по активности ЛДГ, МДГ, НАДФГДГ и ГР рассчитывают величину МК как соотношение произведений активности ГР и НАДФГДГ к произведению активностей ЛДГ и МД. При значении МК ниже 0,005 прогнозируют неблагоприятный исход заболевания, при МК равном или выше 0,005 прогнозируют благоприятный исход РГП.

Данный способ апробирован на 31 больном РГП.

По результатам проведенного определения МК и последующему анализу исхода заболевания установлено, что у 30 больных наблюдалось совпадение прогноза (96,8% совпадений). У одного больного с благоприятным исходом заболевания МК составил 0,0048. Следовательно, чувствительность метода составила 96,8%, специфичность равна 100%.

Клинический пример 1.

Больной В., 33 года (история болезни №26230) доставлен скорой помощью в МБУЗ ГКБСМП им. Н.С. Карповича г.Красноярска с клиникой перитонита. Сопутствующий диагноз: хронический панкреатит. Из анамнеза известно, что болеет в течении 2-х суток.

При исследовании лимфоцитов периферической крови биолюминесцентным методом с определением активности ЛДГ, МДГ, НАДФГДГ и ГР обнаружено, что величина МК составила 0,212 (прогнозируется благоприятный исход РПГ).

Больной оперирован в экстренном порядке. На операции выявлена перфоративная язва желудка, распространенный гнойный перитонит. Произведено ушивание перфоративной язвы, санация, дренирование брюшной полости. Через 48 часов произведена программированная санация брюшной полости.

В послеоперационном периоде в течении 7 дней в условиях ОРИТ проводилась инфузионная, антибактериальная, симптоматическая терапия, перевязки. Затем, по стабилизации состояния, переведен в хирургическое отделение, где консервативная терапия продолжена.

Послеоперационный период без осложнений. Больной выписан на 21-е сутки в удовлетворительном состоянии на амбулаторное лечение у хирурга по месту жительства.

Клинический пример 2.

Больной Г., 44 года (история болезни №16323) доставлен скорой помощью в МБУЗ ГКБСМП им. Н.С. Карповича г.Красноярска с клиникой перитонита. Из анамнеза известно, что болеет в течении 2-х суток, а сутки назад боли в животе приняли разлитой характер.

При исследовании лимфоцитов периферической крови биолюминесцентным методом с определением активности ЛДГ, МДГ, НАДФГДГ и ГР обнаружено, что величина МК составила 1,001 (прогнозируется благоприятный исход РПГ).

Больной оперирован в экстренном порядке. На операции выявлен гангренозно-перфоративный аппендицит, распространенный гнойный перитонит. Произведена аппендэктомия, санация, дренирование брюшной полости. На 2-е и 4-е сутки после первичной операции произведены программированные санации брюшной полости.

В послеоперационном периоде в течении 5 дней в условиях ОРИТ проводилась инфузионная, антибактериальная, симптоматическая терапия, перевязки. Затем консервативная терапия продолжена в хирургическом отделении.

Послеоперационный период без осложнений. Больной выписан на 21-е сутки в удовлетворительном состоянии на амбулаторное лечение у хирурга по месту жительства.

Клинический пример 3.

Больная Г., 73 года (история болезни №11541) доставлена скорой помощью в МБУЗ ГКБСМП им. Н.С. Карповича г.Красноярска с клиникой ущемленной вентральной грыжи, перитонита. Сопутствующий диагноз: ИБС, гипертоническая болезнь. Из анамнеза известно, что болеет в течении 40 часов.

При исследовании лимфоцитов периферической крови биолюминесцентным методом с определением активности ЛДГ, МДГ, НАДФГДГ и ГР обнаружено, что величина МК составила 0,004 (прогнозируется неблагоприятный исход РПГ).

Больной в экстренном порядке произведена герниолапаротомия. На операции выявлен некроз участка тонкой кишки с перфорацией, распространенный гнойный перитонит. Произведена резекция тонкой кишки с наложением анастомоза, санация, дренирование брюшной полости. На 2-е и 4-е сутки после первичной операции произведены программированные санации брюшной полости.

В послеоперационном периоде в условиях ОРИТ проводилась инфузионная, антибактериальная, симптоматическая терапия, перевязки. Послеоперационный период на 13-е сутки после последней программной санации осложнился эвентрацией. Произведено ушивание эвентрации. Несмотря на проводимую терапию состояние больной ухудшалось, нарастала полиорганная недостаточность. На 34-е сутки госпитализации констатирована смерть.

Клинический пример 4.

Больной С., 53 года (история болезни №14710) доставлен скорой помощью в МБУЗ ГКБСМП им. Н.С. Карповича г.Красноярска с клиникой перфорации полого органа, перитонита. Из анамнеза известно, что болеет в течении 8 дней.

При исследовании лимфоцитов периферической крови биолюминесцентным методом с определением активности ЛДГ, МДГ, НАДФГДГ и ГР обнаружено, что величина МК составила 0,001 (прогнозируется неблагоприятный исход РПГ).

Больной в экстренном порядке оперирован. На операции выявлена перфорация ободочной кишки, распространенный гнойный перитонит. Произведена колостомия, санация, дренирование брюшной полости. Через 48 часов произведена программированная санация брюшной полости.

В послеоперационном периоде в условиях ОРИТ проводилась инфузионная, антибактериальная, симптоматическая терапия, перевязки. Несмотря на проводимую терапию состояние больного ухудшалось, нарастала полиорганная недостаточность с развитием септического шока. На 3-й сутки госпитализации констатирована смерть.

Преимуществами предлагаемого способа являются:

1) возможность раннего прогноза исхода РГП - в течение 1 суток после постановки диагноза;

2) высокий уровень достоверности прогноза - 96,8%. Предложенный способ может быть рекомендован для применения в клинической практике.

Используемые источники

1. Березов Т.Т., Коровкин Б.Ф. Биологическая химия. - М.: Медицина, 1998. - 704 с.

2. Патент РФ №2251700 C2, G01N 33/68, G01N 33/48, G01N 33/53, БИПМ №13, 10.05.2005.

3. Патент РФ №2275632 C2, G01N 33/48, G01N 33/49, G01N 33/50, БИПМ №12, 27.04.2006.

4. Патент РФ №2292048 С2, G01N 33/92, БИПМ №2, 20.01.2007.

5. Савченко А.А., Сунцова Л.Н. Высокочувствительное определение активности дегидрогеназ в лимфоцитах периферической крови человека биолюминесцентным методом // Лабораторное дело. - 1989. - №11. - С.23-25.

6. Савченко А.А. Биолюминесцентное определение активности НАД- и НАДФ-зависимых глутаматдегидрогеназ лимфоцитов // Лаб. дело. - 1991. - №11. - С.22-25.

7. Boyum A. Isolation of lymphocytes from blood and bone marroow // Scand. J. Clin. Lab. Invest. - 1968. - Vol.21 (Suppl.97). - P.77-80.